| 致谢 | 第4-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 1 引言 | 第11-28页 |
| 1.1 核酸的核磁共振波谱学 | 第11-19页 |
| 1.1.1 核酸NMR样品制备方法 | 第13页 |
| 1.1.2 核酸NMR研究内容及策略 | 第13-18页 |
| 1.1.3 ~(19)F NMR在核酸研究中的应用 | 第18-19页 |
| 1.2 核酸适配体(Aptamer) | 第19-22页 |
| 1.2.1 Aptamer的筛选 | 第19-20页 |
| 1.2.2 Aptamer的优势与应用 | 第20-21页 |
| 1.2.3 Aptamer识别配体的分子识别机制研究现状 | 第21-22页 |
| 1.3 G-四链体 | 第22-28页 |
| 1.3.1 G-四链体的生物学意义 | 第22-24页 |
| 1.3.2 G-四链体结构 | 第24-25页 |
| 1.3.3 细胞内G-四链体研究现状 | 第25-28页 |
| 2 核酸适配体OBA18识别赭曲霉毒素A的分子机制研究 | 第28-44页 |
| 2.1 前言 | 第28-29页 |
| 2.2 实验与方法 | 第29-30页 |
| 2.2.1 NMR样品制备 | 第29-30页 |
| 2.2.2 NMR实验 | 第30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-43页 |
| 2.3.1 OBA18识别OTA分子机制的NMR研究 | 第30-36页 |
| 2.3.2 OBA18-OTA复合物的结构计算 | 第36-43页 |
| 2.4 小结 | 第43-44页 |
| 3 核酸适配体OBA32识别赭曲霉毒素A的分子机制研究 | 第44-58页 |
| 3.1 前言 | 第44-45页 |
| 3.2 实验和方法 | 第45-50页 |
| 3.2.1 DNA的固相合成及纯化 | 第45-48页 |
| 3.2.2 NMR样品制备 | 第48-49页 |
| 3.2.3 NMR实验 | 第49页 |
| 3.2.4 圆二色谱实验样品制备及实验 | 第49-50页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第50-57页 |
| 3.3.1 圆二色谱实验结果 | 第50-51页 |
| 3.3.2 OBA32识别OTA分子机制的NMR研究 | 第51-53页 |
| 3.3.3 OBA32-OTA复合物二级结构的确认 | 第53-56页 |
| 3.3.4 OBA32-OTA G-四链体去折叠动力学研究 | 第56-57页 |
| 3.4 结论 | 第57-58页 |
| 4 类细胞环境下人端粒DNA G-四链体的构象研究 | 第58-68页 |
| 4.1 前言 | 第58-59页 |
| 4.2 实验和方法 | 第59-60页 |
| 4.2.1 NMR样品的制备 | 第59-60页 |
| 4.2.2 NMR实验 | 第60页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第60-67页 |
| 4.3.1 核酸样品~(19)F标记位点的选择 | 第60-61页 |
| 4.3.2 拥挤试剂中人端粒DNA G-四链体的构象研究 | 第61-64页 |
| 4.3.3 拥挤试剂对人端粒DNA G-四链体结构热稳定性的影响 | 第64-66页 |
| 4.3.4 限域环境下人端粒DNA G-四链体的构象研究 | 第66-67页 |
| 4.4 小结 | 第67-68页 |
| 5 细胞核内DNA G-四链体构象的定量检测 | 第68-79页 |
| 5.1 前言 | 第68页 |
| 5.2 实验和方法 | 第68-71页 |
| 5.2.1 NMR样品制备 | 第68-69页 |
| 5.2.2 细胞裂解液的制备 | 第69-70页 |
| 5.2.3 细胞内样品的制备 | 第70-71页 |
| 5.2.4 NMR实验 | 第71页 |
| 5.2.5 荧光成像实验 | 第71页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第71-78页 |
| 5.3.1 核酸样品~(19)F标记位点的选择 | 第71-72页 |
| 5.3.2 非洲爪蟾卵母细胞内G-四链体构象研究 | 第72-74页 |
| 5.3.3 Hela细胞内G-四链体构象研究 | 第74-78页 |
| 5.4 小结 | 第78-79页 |
| 6 总结与展望 | 第79-81页 |
| 参考文献 | 第81-101页 |
| 附录A | 第101-123页 |
| 作者简介及在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第123-124页 |
