| 中文摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 缩略词列表 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-34页 |
| 1.1 具有抗植物病毒活性的化合物 | 第14-25页 |
| 1.1.1 戊二烯酮类衍生物 | 第14-17页 |
| 1.1.2 查尔酮类衍生物 | 第17-21页 |
| 1.1.3 1,3,4-噁(噻)二唑类衍生物 | 第21-23页 |
| 1.1.4 阿魏酸类衍生物 | 第23-24页 |
| 1.1.5 嘌呤类衍生物 | 第24-25页 |
| 1.2 抗烟草花叶病毒作用机制的研究 | 第25-32页 |
| 1.2.1 抑制病毒的侵染 | 第26-27页 |
| 1.2.2 抑制病毒的增殖和转运 | 第27-29页 |
| 1.2.3 诱导植物的抗病性 | 第29-32页 |
| 1.3 本章小结 | 第32-34页 |
| 第二章 论文设计思想和目的 | 第34-40页 |
| 2.1 研究目的和意义 | 第34页 |
| 2.2 研究思路 | 第34-35页 |
| 2.3 研究内容 | 第35-36页 |
| 2.4 目标化合物合成路线 | 第36-40页 |
| 2.4.1 含嘌呤单元查尔酮衍生物的合成 | 第36-37页 |
| 2.4.2 1,3,4-噁二唑硫代乙氧基的查尔酮类衍生物的合成 | 第37页 |
| 2.4.3 1,3,4-噁(噻)二唑硫代乙氧基的查尔酮类衍生物的合成 | 第37-38页 |
| 2.4.4 1,3,4-噁二唑硫代乙氧基的戊二烯酮类衍生物的合成 | 第38页 |
| 2.4.5 含查尔酮单元阿魏酸衍生物的合成 | 第38-40页 |
| 第三章 目标化合物的合成 | 第40-114页 |
| 3.1 实验仪器与试剂 | 第40页 |
| 3.2 目标化合物的合成 | 第40-113页 |
| 3.2.1 嘌呤查尔酮衍生物的合成 (E1–E17) | 第40-47页 |
| 3.2.2 1,3,4-噁二唑硫代乙氧基的查尔酮类衍生物的合成(C1–C26) | 第47-63页 |
| 3.2.3 1,3,4-噁(噻)二唑硫代乙氧基的查尔酮类衍生物的合成(D1–D26) | 第63-76页 |
| 3.2.4 1,3,4-噁二唑硫代乙氧基的戊二烯酮类衍生物的合成(A1–A31) | 第76-96页 |
| 3.2.5 含阿魏酸单元的查尔酮衍生物的合成 (F1–F35) | 第96-113页 |
| 3.3 本章小结 | 第113-114页 |
| 第四章 抗病毒活性筛选 | 第114-133页 |
| 4.1 目标化合物抗烟草花叶病毒活性 | 第114-116页 |
| 4.1.1 试验材料和缓冲液 | 第114页 |
| 4.1.2 TMV的提纯 | 第114-115页 |
| 4.1.3 抗TMV活性筛选 | 第115-116页 |
| 4.2 目标化合物抗黄瓜花叶病毒活性 | 第116-117页 |
| 4.2.1 试验材料和缓冲液 | 第116页 |
| 4.2.2 CMV的提纯 | 第116-117页 |
| 4.2.3 抗CMV活性筛选 | 第117页 |
| 4.3 结果与分析 | 第117-132页 |
| 4.3.1 含嘌呤单元查尔酮衍生物的抗植物病毒活性 | 第117-119页 |
| 4.3.2 1,3,4-噁二唑硫代乙氧基查尔酮类衍生物的抗植物病毒活性 | 第119-121页 |
| 4.3.3 1,3,4--噁(噻)二唑硫代乙氧基查尔酮类衍生物的抗植物病毒活性 | 第121-124页 |
| 4.3.4 1,3,4-噁二唑硫代乙氧基戊二烯酮类衍生物的抗植物病毒活性 | 第124-127页 |
| 4.3.5 含阿魏酸衍单元的查尔酮生物的抗植物病毒活性 | 第127-132页 |
| 4.4 本章小结 | 第132-133页 |
| 第五章 戊二烯酮类化合物定量构效关系分析 | 第133-142页 |
| 5.1 方法 | 第133-137页 |
| 5.1.1 数据集的选取 | 第133-136页 |
| 5.1.2 数据库的建立 | 第136页 |
| 5.1.3 分子的叠合 | 第136页 |
| 5.1.4 CoMFA和CoMSIA模型的建立 | 第136-137页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第137-140页 |
| 5.3 模型预测的验证 | 第140页 |
| 5.4 本章小结 | 第140-142页 |
| 第六章 抗烟草花叶病毒作用机制研究 | 第142-173页 |
| 6.1 基于TMV CP的作用机制研究 | 第143-155页 |
| 6.1.1 仪器与材料 | 第143-144页 |
| 6.1.2 常用溶液配制 | 第144页 |
| 6.1.3 TMV CP的表达与纯化 | 第144-146页 |
| 6.1.4 荧光光谱法分析化合物F27与TMV CP的相互作用 | 第146-148页 |
| 6.1.5 微量热泳动 (MST) 法分析化合物F27与TMV CP的相互作用 | 第148-150页 |
| 6.1.6 化合物F27与TMV CP分子对接 | 第150-152页 |
| 6.1.7 结合位点的离体验证 | 第152-154页 |
| 6.1.8 结合位点的活体验证 | 第154-155页 |
| 6.2 基于免疫激活的作用机制研究 | 第155-171页 |
| 6.2.1 仪器与试剂 | 第155-156页 |
| 6.2.2 主要溶液的配制 | 第156页 |
| 6.2.3 实验材料的准备 | 第156页 |
| 6.2.4 叶绿素含量测定方法与结果 | 第156-158页 |
| 6.2.5 光合作用测定方法与结果 | 第158-159页 |
| 6.2.6 防御酶活性的测定 | 第159-164页 |
| 6.2.7 水杨酸含量测定方法与结果 | 第164-166页 |
| 6.2.8 差异蛋白分析方法与结果 | 第166-171页 |
| 6.3 本章小结 | 第171-173页 |
| 第七章 结论与展望 | 第173-176页 |
| 7.1 主要结果 | 第173-174页 |
| 7.2 创新点 | 第174页 |
| 7.3 不足与展望 | 第174-176页 |
| 参考文献 | 第176-192页 |
| 致谢 | 第192-193页 |
| 附录 | 第193-206页 |
