摘要 | 第3-5页 |
abstract | 第5-7页 |
缩略语表 | 第16-17页 |
1 前言 | 第17-27页 |
1.1 玉米秸秆资源分布及利用现状 | 第17-20页 |
1.1.1 秸秆还田方式比较 | 第18-19页 |
1.1.2 秸秆还田的生物学效应 | 第19-20页 |
1.1.3 我国北方春玉米区生态环境条件与秸秆还田问题分析 | 第20页 |
1.2 秸秆纤维素降解酶系 | 第20页 |
1.3 秸秆降解菌研究进展 | 第20-23页 |
1.3.1 纤维素降解单菌株的筛选研究 | 第20-21页 |
1.3.2 秸秆降解复合菌系的筛选研究 | 第21-22页 |
1.3.3 秸秆降解菌秸秆分解特性研究 | 第22-23页 |
1.3.4 秸秆降解菌对还田秸秆的分解作用研究 | 第23页 |
1.4 分子生态学技术在微生物中的应用研究 | 第23-24页 |
1.5 本研究切入点 | 第24-25页 |
1.6 研究内容 | 第25页 |
1.7 研究的目的与意义 | 第25-26页 |
1.8 技术路线 | 第26-27页 |
2 玉米秸秆低温高效降解复合菌系的筛选 | 第27-47页 |
2.1 材料与方法 | 第27-35页 |
2.1.1 试验时间与地点 | 第27页 |
2.1.2 菌源样品的采集 | 第27-30页 |
2.1.3 培养基及成分 | 第30-31页 |
2.1.4 试验设计 | 第31-32页 |
2.1.5 测定项目与方法 | 第32-35页 |
2.2 结果与分析 | 第35-46页 |
2.2.1 玉米秸秆低温高效降解复合菌系的富集培养 | 第35-36页 |
2.2.2 玉米秸秆低温高效降解复合菌系的限制性继代培养与低温驯化 | 第36-37页 |
2.2.3 玉米秸秆低温高效降解复合菌系的初筛 | 第37-40页 |
2.2.4 玉米秸秆低温高效降解复合菌系的复筛 | 第40-41页 |
2.2.5 玉米秸秆低温高效降解复合菌系对木质纤维素的分解 | 第41-42页 |
2.2.6 不同初始pH和温度条件下复合菌系秸秆分解活性变化 | 第42-46页 |
2.3 小结 | 第46-47页 |
3 玉米秸秆低温高效降解复合菌系的生长特性 | 第47-53页 |
3.1 材料与方法 | 第47-48页 |
3.1.1 试验时间与地点 | 第47页 |
3.1.2 供试材料 | 第47页 |
3.1.3 培养基及成分 | 第47页 |
3.1.4 试验设计 | 第47页 |
3.1.5 测定项目与方法 | 第47-48页 |
3.2 结果与分析 | 第48-52页 |
3.2.1 复合菌系生长曲线与发酵液pH值动态 | 第48页 |
3.2.2 复合菌系玉米秸秆降解率的动态 | 第48-49页 |
3.2.3 复合菌系纤维素酶活性的动态 | 第49页 |
3.2.4 复合菌系发酵液可溶性糖含量的动态 | 第49-50页 |
3.2.5 复合菌系发酵液总糖含量的动态 | 第50页 |
3.2.6 复合菌系发酵液可溶性化学需氧量(sCOD)的动态 | 第50-51页 |
3.2.7 复合菌系发酵液氧化还原电位(ORP)的动态 | 第51页 |
3.2.8 复合菌系发酵产物动态 | 第51-52页 |
3.3 小结 | 第52-53页 |
4 玉米秸秆低温高效降解复合菌系菌种组成特性 | 第53-62页 |
4.1 材料与方法 | 第53-55页 |
4.1.1 试验时间与地点 | 第53页 |
4.1.2 供试材料 | 第53页 |
4.1.3 培养基及成分 | 第53页 |
4.1.4 试验设计 | 第53-54页 |
4.1.5 测定项目与方法 | 第54-55页 |
4.2 结果与分析 | 第55-61页 |
4.2.1 复合菌系细菌菌种组成多样性 | 第55-56页 |
4.2.2 复合菌系真菌菌种组成多样性 | 第56-57页 |
4.2.3 复合菌系单菌株的分离纯化、革兰氏染色及分子鉴定 | 第57-60页 |
4.2.4 复合菌系单菌株Biolog鉴定 | 第60-61页 |
4.3 小结 | 第61-62页 |
5 玉米秸秆低温高效降解复合菌系的稳定性 | 第62-87页 |
5.1 材料与方法 | 第62-64页 |
5.1.1 试验时间与地点 | 第62页 |
5.1.2 供试材料 | 第62页 |
5.1.3 培养基及成分 | 第62页 |
5.1.4 试验设计 | 第62-64页 |
5.1.5 测定项目与方法 | 第64页 |
5.2 结果与分析 | 第64-85页 |
5.2.1 复合菌系玉米秸秆分解菌系动态稳定性 | 第64-66页 |
5.2.2 复合菌系不同代数、温度、pH稳定性 | 第66-72页 |
5.2.3 复合菌系不同碳源和氮源稳定性 | 第72-75页 |
5.2.4 复合菌系变温稳定性 | 第75-79页 |
5.2.5 复合菌系稀释梯度稳定性 | 第79-85页 |
5.3 小结 | 第85-87页 |
6 玉米秸秆低温高效降解复合菌系的产酶特性 | 第87-97页 |
6.1 材料与方法 | 第87-89页 |
6.1.1 试验时间与地点 | 第87页 |
6.1.2 供试材料 | 第87页 |
6.1.3 培养基及成分 | 第87页 |
6.1.4 试验设计 | 第87-89页 |
6.1.5 测定项目与方法 | 第89页 |
6.2 结果与分析 | 第89-96页 |
6.2.1 pH值对复合菌系酶活性的影响 | 第89-90页 |
6.2.2 渗透压对复合菌系酶活性的影响 | 第90页 |
6.2.3 温度对复合菌系酶活性的影响 | 第90页 |
6.2.4 接种量对复合菌系酶活性的影响 | 第90页 |
6.2.5 碳源对复合菌系酶活性的影响 | 第90-91页 |
6.2.6 氮源对复合菌系酶活性的影响 | 第91-92页 |
6.2.7 复合菌系GF-20发酵条件优化 | 第92-94页 |
6.2.8 复合菌系GF-20 Cx酶稳定性研究 | 第94-96页 |
6.3 小结 | 第96-97页 |
7 玉米秸秆低温高效降解复合菌系应用 | 第97-122页 |
7.1 材料与方法 | 第97-101页 |
7.1.1 试验时间与地点 | 第97页 |
7.1.2 供试材料 | 第97-98页 |
7.1.3 培养基及成分 | 第98页 |
7.1.4 试验设计 | 第98-99页 |
7.1.5 测定项目与方法 | 第99-101页 |
7.2 结果与分析 | 第101-120页 |
7.2.1 玉米秸秆低温高效降解复合菌剂室内土培应用效果 | 第101-119页 |
7.2.2 玉米秸秆低温高效降解复合菌剂大田应用效果 | 第119页 |
7.2.3 玉米秸秆低温高效降解复合菌系对玉米种子发芽率的影响 | 第119-120页 |
7.3 小结 | 第120-122页 |
8 讨论 | 第122-130页 |
8.1 玉米秸秆低温高效降解复合菌系的筛选 | 第122-124页 |
8.1.1 筛选玉米秸秆高效降解复合菌系菌源材料的选择 | 第122页 |
8.1.2 改进玉米秸秆高效降解复合菌系的筛选技术 | 第122-123页 |
8.1.3 玉米秸秆低温高效降解复合菌系的分解效果 | 第123-124页 |
8.2 玉米秸秆低温高效降解复合菌系关键菌株探讨 | 第124-125页 |
8.3 玉米秸秆低温高效降解复合菌系稳定性 | 第125-126页 |
8.4 玉米秸秆低温高效降解复合菌系发酵条件 | 第126-127页 |
8.5 玉米秸秆低温高效降解复合菌剂GF-20应用效果 | 第127-130页 |
8.5.1 施用玉米秸秆低温高效降解菌剂GF-20对玉米秸秆的分解作用 | 第127-128页 |
8.5.2 施用玉米秸秆低温高效降解菌剂GF-20对土壤养分的影响 | 第128-129页 |
8.5.3 施用玉米秸秆低温高效降解菌剂GF-20对土壤微生物的影响 | 第129-130页 |
9 结论 | 第130-132页 |
9.1 筛选玉米秸秆低温高效降解复合菌系GF-20 | 第130页 |
9.2 玉米秸秆低温高效降解复合菌系GF-20的菌种组成多样性 | 第130页 |
9.3 玉米秸秆低温高效降解复合菌系GF-20的稳定性 | 第130页 |
9.4 玉米秸秆低温高效降解复合菌系GF-20的发酵产酶条件 | 第130-131页 |
9.5 玉米秸秆低温高效降解复合菌剂GF-20的促腐作用 | 第131-132页 |
10 创新点与展望 | 第132-133页 |
10.1 创新点 | 第132页 |
10.2 展望 | 第132-133页 |
致谢 | 第133-135页 |
参考文献 | 第135-153页 |
作者简介 | 第153页 |