符号说明 | 第4-8页 |
中文摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-11页 |
1 前言 | 第13-26页 |
1.1 光抑制 | 第13-16页 |
1.1.1 光抑制的发现 | 第13-14页 |
1.1.2 光抑制的分类 | 第14-16页 |
1.1.2.1 PSII的光抑制 | 第14-15页 |
1.1.2.2 PSI的光抑制 | 第15-16页 |
1.2 植物光破坏防御机制 | 第16-20页 |
1.2.1 减少光能吸收 | 第16页 |
1.2.2 增加光能利用 | 第16-19页 |
1.2.2.1 环式电子传递 | 第16-17页 |
1.2.2.2 水-水循环 | 第17页 |
1.2.2.3 光呼吸 | 第17-18页 |
1.2.2.4 活性氧清除系统 | 第18页 |
1.2.2.5 叶绿体呼吸 | 第18-19页 |
1.2.3 促进光能耗散 | 第19-20页 |
1.3 呼吸作用 | 第20-23页 |
1.3.1 线粒体呼吸电子传递链 | 第20-21页 |
1.3.2 AOX蛋白的研究进展 | 第21-22页 |
1.3.3 AOX的氧化还原状态 | 第22页 |
1.3.4 干旱胁迫对AOX途径的影响 | 第22-23页 |
1.4 苹果果树与干旱胁迫 | 第23-25页 |
1.4.1 苹果对干旱的反应 | 第23-24页 |
1.4.2 干旱条件下苹果光抑制研究及存在问题 | 第24-25页 |
1.5 本研究的目的与意义 | 第25-26页 |
2 材料与方法 | 第26-31页 |
2.1 实验材料 | 第26页 |
2.2 实验材料处理 | 第26-27页 |
2.2.1 长期干旱处理 | 第26页 |
2.2.2 快速脱水处理 | 第26-27页 |
2.3 实验方法 | 第27-30页 |
2.3.1 水势的测定 | 第27页 |
2.3.2 呼吸速率测定 | 第27-28页 |
2.3.3 叶绿素荧光的测定 | 第28-29页 |
2.3.4 叶片气体交换参数的测定 | 第29页 |
2.3.5 活性氧的检测 | 第29-30页 |
2.3.6 蛋白含量的检测 | 第30页 |
2.4 统计分析 | 第30-31页 |
3 结果与分析 | 第31-45页 |
3.1 活体植株干旱胁迫下AOX途径的光破坏防御作用 | 第31-37页 |
3.1.1 干旱胁迫对平邑甜茶叶片水势的影响 | 第31页 |
3.1.2 干旱胁迫对平邑甜茶叶片AOX途径活性的影响 | 第31-32页 |
3.1.3 干旱胁迫对平邑甜茶叶片AOX蛋白含量的影响 | 第32-33页 |
3.1.4 不同光照时间下AOX活性比例的变化 | 第33页 |
3.1.5 SHAM处理对AOX途径的影响 | 第33-34页 |
3.1.6 SHAM处理抑制AOX途径后对平邑甜茶的F_v/F_m影响 | 第34-35页 |
3.1.7 SHAM处理抑制AOX途径对平邑甜茶叶片OJIP曲线的影响 | 第35页 |
3.1.8 干旱胁迫抑制AOX途径对平邑甜茶叶片光合电子传递的影响 | 第35-36页 |
3.1.9 AOX途径受抑对平邑甜茶叶片中H_2O_2含量的影响 | 第36-37页 |
3.2 离体叶片快速脱水胁迫下AOX途径的光破坏防御作用 | 第37-45页 |
3.2.1 脱水过程中平邑甜茶叶片水势的变化 | 第37-38页 |
3.2.2 脱水胁迫对平邑甜茶叶片AOX途径活性的影响 | 第38-39页 |
3.2.3 脱水及SHAM处理对平邑甜茶叶片AOX呼吸的影响 | 第39-40页 |
2.2.4 脱水及SHAM处理对平邑甜茶叶片快速叶绿素荧光诱导曲线的影响 | 第40-41页 |
3.2.5 AOX途径受抑对脱水胁迫下平邑甜茶叶片光抑制的影响 | 第41-42页 |
3.2.6 AOX途径受抑对PSII供体侧的影响 | 第42页 |
3.2.7 AOX途径受抑对PSII反应中心的影响 | 第42-43页 |
3.2.8 AOX途径受抑对PSII受体侧的影响 | 第43-44页 |
3.2.9 脱水及SHAM处理对平邑甜茶叶片PSI活性的影响 | 第44-45页 |
4 讨论 | 第45-49页 |
4.1 干旱对平邑甜茶叶片AOX途径的诱导 | 第45页 |
4.2 AOX途径在干旱胁迫下的光破坏防御作用 | 第45-47页 |
4.3 AOX途径在干旱胁迫下的对平邑甜茶叶片起直接的光破坏防御作用 | 第47页 |
4.4 干旱胁迫下AOX途径的光破坏防御作用的不可替代性 | 第47-49页 |
5 结论 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-58页 |
致谢 | 第58-59页 |
攻读学位期间发表论文情况 | 第59页 |