| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第12-24页 |
| 1.1 高温胁迫对植物的影响 | 第12-14页 |
| 1.1.1 高温对植物光合作用的影响 | 第13页 |
| 1.1.2 高温对植物ROS产生和清除的影响 | 第13-14页 |
| 1.1.3 高温对蛋白修复循环的影响 | 第14页 |
| 1.2 甜菜碱概述 | 第14-20页 |
| 1.2.1 甜菜碱合成途径 | 第15-17页 |
| 1.2.2 甜菜碱基因工程研究 | 第17页 |
| 1.2.3 甜菜碱的运输 | 第17-18页 |
| 1.2.4 甜菜碱对光合机构的保护作用 | 第18-20页 |
| 1.3 PSⅡ的修复循环 | 第20-23页 |
| 1.3.1 PSⅡ结构和功能 | 第20-21页 |
| 1.3.2 PSⅡ的光抑制 | 第21-22页 |
| 1.3.3 PSⅡ修复循环的蛋白酶 | 第22-23页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第23-24页 |
| 2 材料与方法 | 第24-35页 |
| 2.1 实验材料与处理 | 第24-26页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第24页 |
| 2.1.2 实验材料培养和处理 | 第24页 |
| 2.1.3 主要仪器、酶与实验试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.4 PCR所用引物 | 第25-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-28页 |
| 2.2.1 CTAB法提取植物基因组DNA | 第26-27页 |
| 2.2.2 目的基因的PCR扩增 | 第27-28页 |
| 2.3 生理指标测定 | 第28-29页 |
| 2.3.1 甜菜碱含量测定 | 第28页 |
| 2.3.2 光合速率测定 | 第28页 |
| 2.3.3 叶绿素荧光测定 | 第28-29页 |
| 2.3.4 ROS生成测定 | 第29页 |
| 2.3.5 抗氧化酶活性的测定 | 第29页 |
| 2.3.6 卡尔文循环关键酶活性测定 | 第29页 |
| 2.4 分子生物学实验 | 第29-34页 |
| 2.4.1 Trizol法提取植物总RNA | 第29-30页 |
| 2.4.2 反转录获得cDNA的第一条链 | 第30-31页 |
| 2.4.3 实时荧光定量PCR | 第31页 |
| 2.4.4 类囊体膜的提取 | 第31-32页 |
| 2.4.5 可溶性蛋白的提取 | 第32页 |
| 2.4.6 聚丙烯酰氨凝胶电泳 | 第32-33页 |
| 2.4.7 半干法蛋白转移 | 第33页 |
| 2.4.8 免疫检测 | 第33-34页 |
| 2.4.9 ECL化学发光法显色 | 第34页 |
| 2.5 统计分析 | 第34-35页 |
| 3 结果与分析 | 第35-51页 |
| 3.1 转基因植株的鉴定 | 第35-36页 |
| 3.2 转基因植株叶片内甜菜碱含量 | 第36-37页 |
| 3.3 甜菜碱对番茄植株净光合速率影响 | 第37页 |
| 3.4 甜菜碱对番茄植株叶绿素荧光变化的影响 | 第37-40页 |
| 3.5 甜菜碱对番茄植株体内ROS影响 | 第40-41页 |
| 3.6 甜菜碱对番茄植株体内抗氧化酶活性的影响 | 第41-42页 |
| 3.7 甜菜碱对番茄植株体内卡尔文循环关键酶活性的影响 | 第42-43页 |
| 3.8 甜菜碱对相关基因表达的影响 | 第43-48页 |
| 3.8.1 甜菜碱对抗氧化酶相关基因表达的影响 | 第43-44页 |
| 3.8.2 甜菜碱对D1蛋白基因表达的影响 | 第44-45页 |
| 3.8.3 甜菜碱对相关蛋白酶基因表达的影响 | 第45-48页 |
| 3.9 甜菜碱对番茄植株体内可溶性蛋白氧化水平的影响 | 第48-49页 |
| 3.10 甜菜碱对D1含量的影响 | 第49-51页 |
| 4 讨论 | 第51-55页 |
| 5 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-61页 |
| 致谢 | 第61页 |