| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 符号说明 | 第11-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-18页 |
| 1 LXR对脂代谢的调节 | 第12-13页 |
| 1.1 LXR的结构 | 第12页 |
| 1.2 LXR对胆固醇的代谢 | 第12-13页 |
| 2 PPARs对脂代谢的调节 | 第13页 |
| 3 SREBPs与脂代谢 | 第13-14页 |
| 4 FGF19与脂代谢 | 第14-15页 |
| 4.1 FGF19分子特征以及调控机制 | 第14页 |
| 4.2 FGF19参与调控脂代谢机制 | 第14-15页 |
| 5 miRNA与脂代谢 | 第15-16页 |
| 5.1 miRNA概述 | 第15页 |
| 5.2 miRNA对胆固醇和脂肪酸代谢的调节 | 第15-16页 |
| 6 脂联素与脂代谢 | 第16-17页 |
| 7 海马与认知功能障碍 | 第17页 |
| 8 认知功能障碍与脂代谢 | 第17页 |
| 9 研究的目的和意义 | 第17-18页 |
| 第二章 SD大鼠认知障碍动物模型制作及其对大鼠血脂水平的影响 | 第18-24页 |
| 1 实验材料 | 第18-19页 |
| 1.1 实验动物 | 第18页 |
| 1.2 主要实验试剂 | 第18页 |
| 1.3 主要实验仪器 | 第18-19页 |
| 1.4 主要溶液的配制 | 第19页 |
| 2 实验方法 | 第19-21页 |
| 2.1 模型建立及实验分组 | 第19-20页 |
| 2.2 各组大鼠认知功能的检测 | 第20页 |
| 2.3 大鼠血脂水平的检测 | 第20-21页 |
| 2.4 统计分析 | 第21页 |
| 3 实验结果 | 第21-22页 |
| 3.1 Morris水迷宫实验检测结果 | 第21页 |
| 3.2 全自动生化分析仪对血脂的检测结果 | 第21-22页 |
| 4 讨论 | 第22-23页 |
| 5 小结 | 第23-24页 |
| 第三章 TUNEL法检测SD大鼠海马神经元凋亡情况 | 第24-28页 |
| 1 材料 | 第24-25页 |
| 1.1 实验试剂 | 第24页 |
| 1.2 实验仪器 | 第24页 |
| 1.3 主要溶液的配制 | 第24-25页 |
| 2 方法 | 第25页 |
| 2.1 样品采集 | 第25页 |
| 2.2 TUNEL法染色检测大鼠海马神经元凋亡情况 | 第25页 |
| 2.3 统计分析 | 第25页 |
| 3 结果 | 第25-26页 |
| 4 讨论 | 第26-27页 |
| 5 小结 | 第27-28页 |
| 第四章 认知障碍SD大鼠肝脏HMG-CR的表达情况 | 第28-42页 |
| 1 材料 | 第28-30页 |
| 1.1 实验试剂 | 第28-29页 |
| 1.2 引物设计 | 第29页 |
| 1.3 实验仪器 | 第29页 |
| 1.4 主要溶液的配制 | 第29-30页 |
| 2 方法 | 第30-38页 |
| 2.1 样品采集 | 第30页 |
| 2.2 RT-PCR法测定肝脏HMG-CRmRNA的表达 | 第30-34页 |
| 2.3 Western Blot法检测大鼠肝脏组织中的HMG-CR表达水平 | 第34-38页 |
| 2.4 统计分析 | 第38页 |
| 3 结果 | 第38-40页 |
| 3.1 RT-PCR法对肝脏HMG-CRmRNA的表达情况进行测定 | 第38-39页 |
| 3.2 Western Blot法对肝脏HMG-CR蛋白的表达结果进行检测 | 第39-40页 |
| 4 讨论 | 第40-41页 |
| 5 小结 | 第41-42页 |
| 第五章 总结 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第53页 |
