| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 第一部分 文献综述 | 第9-34页 |
| 肿瘤血管生成治疗研究进展 | 第9-20页 |
| 文献 | 第16-20页 |
| 抗肿瘤抗体靶向治疗研究进展 | 第20-34页 |
| 文献 | 第30-34页 |
| 第二部分 实验部分 | 第34-67页 |
| 第一章 骆驼抗卵泡刺激素受体（FSHR)多克隆抗体的制备及检测 | 第34-55页 |
| 摘要 | 第34-36页 |
| 1 材料和方法 | 第36-38页 |
| ·材料 | 第36-37页 |
| ·实验器材 | 第36页 |
| ·实验试剂 | 第36-37页 |
| ·载体 | 第37页 |
| ·实验动物 | 第37页 |
| ·培养基及溶液配制 | 第37-38页 |
| 2 实验方法 | 第38-45页 |
| ·FSHR 234重组抗原蛋白的大量原核诱导表达及纯化 | 第38-39页 |
| ·FSHR 234重组抗原蛋白的大量原核诱导表达 | 第38-39页 |
| ·FSHR234重组抗原蛋白的纯化 | 第39页 |
| ·Western Blot检测FSHR234重组蛋白 | 第39-40页 |
| ·Bradford蛋白浓度测定法测定FSHR 234蛋白浓度 | 第40页 |
| ·新疆双峰驼的免疫及血样采集 | 第40-41页 |
| ·间接ELISA检测抗FSHR多克隆抗体效价 | 第41-42页 |
| ·Western Blot检测骆驼抗FSHR多克隆抗体结合活性 | 第42页 |
| ·流式细胞检测骆驼抗FSHR多克隆抗体结合活性 | 第42-43页 |
| ·小鼠肿瘤组织的石蜡包埋及组织切片的制备 | 第43-44页 |
| ·免疫组化检测抗FSHR多克隆抗体结合活性 | 第44-45页 |
| 3 实验结果 | 第45-51页 |
| ·FSHR234重组蛋白的诱导表达及纯化 | 第45-46页 |
| ·Western Blot检测FSHR234蛋白 | 第46-47页 |
| ·纯化后重组蛋白FSHR234的浓度测定 | 第47页 |
| ·新疆双峰驼的免疫及抗FSHR多克隆抗体效价的检测 | 第47-49页 |
| ·Western Blot检测骆驼抗FSHR多克隆抗体结合活性 | 第49页 |
| ·流式细胞术检测骆驼抗FSHR多克隆抗体结合活性 | 第49-50页 |
| ·免疫组化检测CT-26小鼠移植瘤中FSHR表达情况 | 第50-51页 |
| 4 讨论 | 第51-52页 |
| 5 参考文献 | 第52-55页 |
| 第二章 双峰驼抗FSHR多克隆抗体抗肿瘤靶向治疗作用的初步研究 | 第55-67页 |
| 摘要 | 第55-56页 |
| 1 实验材料 | 第56-58页 |
| ·实验器材 | 第56页 |
| ·实验动物 | 第56页 |
| ·细胞 | 第56页 |
| ·试剂及溶液配制 | 第56-58页 |
| 2 实验方法 | 第58-61页 |
| ·小鼠结肠癌移植瘤肿瘤模型的建立 | 第58-61页 |
| ·CT-26细胞的复苏 | 第58页 |
| ·CT-26细胞的传代培养 | 第58-59页 |
| ·CT-26细胞的计数 | 第59-60页 |
| ·CT-26细胞的冻存 | 第60页 |
| ·CT-26移植瘤肿瘤模型的建立 | 第60-61页 |
| ·荷瘤Balb/C小鼠的分组 | 第61页 |
| ·Balb/C小鼠CT-26移植瘤生长情况的观察及抗肿瘤免疫治疗 | 第61页 |
| 3 实验结果 | 第61-65页 |
| ·CT-26细胞的培养及动物移植瘤模型的建立 | 第61-62页 |
| ·对荷瘤Balb/c小鼠的抗体免疫治疗 | 第62页 |
| ·抗FSHR多克隆抗体治疗对小鼠移植瘤生长影响的观察 | 第62-65页 |
| 4 讨论 | 第65页 |
| 5 参考文献 | 第65-67页 |
| 结论 | 第67页 |
| 展望 | 第67-68页 |
| 英文缩略语 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 个人简历 | 第70页 |
| 参与课题及发表文章 | 第70-71页 |
