| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-14页 |
| 1 前言 | 第14-21页 |
| ·海洋药物研究现状 | 第14-18页 |
| ·国内外海洋药物研究历史的简要回顾 | 第14-15页 |
| ·海洋药物的来源 | 第15-17页 |
| ·采集和加工野生资源 | 第16页 |
| ·人工栽培和养殖药源 | 第16页 |
| ·采用现代科学技术手段解决药源问题 | 第16-17页 |
| ·分子修饰和人工合成技术 | 第17页 |
| ·生物技术和学科 | 第17页 |
| ·现有技术的集成组装 | 第17页 |
| ·海洋药物的种类及活性 | 第17-18页 |
| ·海洋动物多糖的研究现状 | 第18-20页 |
| ·海洋动物多糖的种类及活性 | 第18-19页 |
| ·海洋动物多糖的提取、分离与纯化 | 第19-20页 |
| ·海洋动物多糖的提取 | 第19页 |
| ·多糖的分离与纯化 | 第19-20页 |
| ·紫蛇尾资源的研究现状 | 第20页 |
| ·本课题研究内容和创新点 | 第20-21页 |
| ·研究内容 | 第20-21页 |
| ·创新点 | 第21页 |
| 2 紫蛇尾粗多糖的提取工艺研究 | 第21-27页 |
| ·引言 | 第21页 |
| ·材料、仪器和试剂 | 第21-22页 |
| ·实验材料 | 第21页 |
| ·主要实验仪器 | 第21-22页 |
| ·实验试剂 | 第22页 |
| ·实验方法 | 第22-23页 |
| ·紫蛇尾粗多糖提取工艺流程图 | 第22页 |
| ·单因素试验设计 | 第22页 |
| ·提取温度 | 第22页 |
| ·提取时间 | 第22页 |
| ·料水比 | 第22页 |
| ·提取次数 | 第22页 |
| ·正交试验设计 | 第22-23页 |
| ·实验结果 | 第23-26页 |
| ·采用苯酚—硫酸法测定总糖含量 | 第23页 |
| ·单因素实验结果 | 第23-25页 |
| ·温度对多糖得率的影响 | 第23-24页 |
| ·提取时间对多糖得率的影响 | 第24页 |
| ·料水比单因素实验 | 第24-25页 |
| ·提取次数单因素实验 | 第25页 |
| ·正交实验结果与分析 | 第25-26页 |
| ·正交实验样品多糖含量测定 | 第25-26页 |
| ·紫蛇尾多糖的提取的最佳工艺 | 第26页 |
| ·结论 | 第26-27页 |
| 3 紫蛇尾多糖脱蛋白工艺的研究 | 第27-31页 |
| ·引言 | 第27页 |
| ·实验材料，仪器与药品 | 第27-28页 |
| ·实验材料 | 第27页 |
| ·实验仪器 | 第27页 |
| ·实验药品 | 第27-28页 |
| ·试验方法 | 第28-29页 |
| ·紫蛇尾粗多糖的提取 | 第28页 |
| ·粗多糖含量的测定方法 | 第28页 |
| ·蛋白质含量的测定方法 | 第28页 |
| ·脱蛋白方法 | 第28-29页 |
| ·Sevag 法 | 第28页 |
| ·酶法 | 第28-29页 |
| ·酶-Sevag 法 | 第29页 |
| ·结果 | 第29-31页 |
| ·苯酚硫酸法测定多糖含量 | 第29页 |
| ·Sevag 法脱蛋白结果 | 第29页 |
| ·酶法脱蛋白正交试验结果 | 第29-30页 |
| ·酶-Sevag 法联用脱蛋白结果 | 第30-31页 |
| ·结论 | 第31页 |
| 4 紫蛇尾多糖的提取、分离纯化及理化性质研究 | 第31-45页 |
| ·引言 | 第31页 |
| ·实验材料、仪器及试剂 | 第31-33页 |
| ·实验材料 | 第31页 |
| ·实验仪器 | 第31-32页 |
| ·实验试剂 | 第32-33页 |
| ·试验方法 | 第33-37页 |
| ·紫蛇尾粗多糖的提取 | 第33页 |
| ·脱蛋白 | 第33页 |
| ·透析 | 第33页 |
| ·醇沉 | 第33页 |
| ·超滤 | 第33-34页 |
| ·Cellulose DEAE-52 柱层析 | 第34-35页 |
| ·DEAE-cellulose 52 的预处理 | 第34页 |
| ·装柱 | 第34-35页 |
| ·上样与洗脱 | 第35页 |
| ·Sephadex G-100 凝胶柱层析 | 第35页 |
| ·Sephadex G-100 的预处理 | 第35页 |
| ·装柱 | 第35页 |
| ·上样与洗脱 | 第35页 |
| ·理化性质研究 | 第35-37页 |
| ·硫酸基团的鉴别及含量测定 | 第35-36页 |
| ·硫酸基团的鉴定 | 第35-36页 |
| ·比浊法测定硫酸根含量 | 第36页 |
| ·糖醛酸含量测定 | 第36页 |
| ·Molish 反应 | 第36页 |
| ·碘- 碘化钾反应 | 第36-37页 |
| ·茚三酮反应 | 第37页 |
| ·紫外光谱分析 | 第37页 |
| ·红外光谱分析 | 第37页 |
| ·试验结果与讨论 | 第37-45页 |
| ·苯酚硫酸法测定多糖含量 | 第37-38页 |
| ·考马斯亮蓝法测定蛋白质含量 | 第38页 |
| ·醇沉后得到多糖的量 | 第38页 |
| ·Cellulose DEAE-52 柱层析洗脱曲线 | 第38-39页 |
| ·Sephadex G-100 凝胶柱层析洗脱曲线 | 第39-40页 |
| ·理化性质研究结果 | 第40-45页 |
| ·硫酸基团的鉴别及含量测定结果 | 第40-41页 |
| ·硫酸基团的鉴别结果 | 第40-41页 |
| ·硫酸基团含量的测定结果 | 第41页 |
| ·糖醛酸含量测定结果 | 第41-42页 |
| ·Molish反应 | 第42页 |
| ·碘- 碘化钾反应 | 第42页 |
| ·茚三酮反应 | 第42页 |
| ·紫外光谱分析结果 | 第42-43页 |
| ·红外光谱分析结果 | 第43-45页 |
| ·结论 | 第45页 |
| 5 紫蛇尾多糖的抑菌活性研究 | 第45-57页 |
| ·前言 | 第45页 |
| ·材料、仪器和试剂 | 第45-46页 |
| ·实验材料及菌种 | 第45-46页 |
| ·主要实验仪器 | 第46页 |
| ·实验试剂 | 第46页 |
| ·实验方法 | 第46-48页 |
| ·多糖制备 | 第46-47页 |
| ·配置培养基 | 第47页 |
| ·菌种活化 | 第47页 |
| ·平板计数法测定菌悬液浓度 | 第47页 |
| ·稀释 | 第47页 |
| ·取样 | 第47页 |
| ·倒平板 | 第47页 |
| ·制备含药液培养基培养菌株 | 第47-48页 |
| ·取样 | 第47-48页 |
| ·加药液 | 第48页 |
| ·倒平板 | 第48页 |
| ·滤纸片法测定抑菌活性大小 | 第48页 |
| ·最低抑菌浓度测定 | 第48页 |
| ·试验结果 | 第48-57页 |
| ·苯酚硫酸法测定多糖含量 | 第48页 |
| ·平板菌落法测定抑菌大小结果 | 第48页 |
| ·滤纸片法法测定抑菌大小结果 | 第48-49页 |
| ·最低抑菌浓度结果 | 第49-57页 |
| ·结论 | 第57页 |
| 6 紫蛇尾粗多糖抗氧化研究 | 第57-63页 |
| ·前言 | 第57页 |
| ·材料、仪器和试剂 | 第57-58页 |
| ·实验材料 | 第57页 |
| ·主要实验仪器 | 第57页 |
| ·实验试剂 | 第57-58页 |
| ·实验方法 | 第58-60页 |
| ·紫蛇尾粗多糖还原能力的测定 | 第58页 |
| ·紫蛇尾粗多糖对 OH 的清除作用 | 第58-59页 |
| ·紫蛇尾粗多糖对 O_2~-的清除作用 | 第59页 |
| ·紫蛇尾粗多糖体外抗红细胞膜脂质过氧化 | 第59-60页 |
| ·制备红细胞膜 | 第59页 |
| ·空白组，对照组及样品组的制备 | 第59-60页 |
| ·实验结果与讨论 | 第60-63页 |
| ·紫蛇尾粗多糖还原能力的测定结果 | 第60页 |
| ·紫蛇尾粗多糖对 OH 的清除作用测定结果 | 第60-61页 |
| ·紫蛇尾粗多糖对 O_2~-的清除作用测定结果 | 第61-62页 |
| ·紫蛇尾粗多糖体外抗红细胞膜脂质过氧化 | 第62-63页 |
| ·结论 | 第63页 |
| 7 紫蛇尾粗多糖对心肌细胞的保护作用 | 第63-74页 |
| ·前言 | 第63-64页 |
| ·材料、仪器和试剂 | 第64页 |
| ·实验材料 | 第64页 |
| ·主要实验仪器 | 第64页 |
| ·实验试剂 | 第64页 |
| ·实验方法 | 第64-66页 |
| ·紫蛇尾粗多糖对 H9c2 细胞氧化损伤的影响 | 第64-65页 |
| ·心肌细胞 H9c2 氧化损伤模型的构建 | 第65页 |
| ·对H9c2氧化损伤的保护作用 | 第65页 |
| ·对氧化损伤引起 H9c2 细胞凋亡率的影响 | 第65页 |
| ·对氧化损伤引起H9c2线粒体膜电位的影响 | 第65页 |
| ·对氧化损伤 H9c2 Bcl-2 和 Bax 表达的影响 | 第65页 |
| ·对缺氧心肌细胞内Ca~(2+)浓度的影响 | 第65-66页 |
| ·紫蛇尾粗多糖对AKT细胞通路的影响 | 第66页 |
| ·实验结果与讨论 | 第66-74页 |
| ·紫蛇尾粗多糖对 H9c2 细胞氧化损伤的影响 | 第66-67页 |
| ·心肌细胞 H9c2 氧化损伤模型的构建 | 第66-67页 |
| ·对 H9c2 氧化损伤的保护作用 | 第67页 |
| ·对氧化损伤引起 H9c2 细胞凋亡率的影响 | 第67-70页 |
| ·对氧化损伤引起 H9c2 线粒体膜电位的影响 | 第70页 |
| ·对氧化损伤 H9c2 Bcl-2 和 Bax 表达的影响 | 第70-71页 |
| ·对缺氧心肌细胞内Ca~(2+)浓度的影响 | 第71-74页 |
| 参考文献 | 第74-78页 |
| 附录Ⅰ攻读学位期间发表的论文目录 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
