| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 英文摘要 | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-40页 |
| 引言 | 第10-11页 |
| 第一节 卡拉胶简介 | 第11-15页 |
| 第二节 卡拉胶降解酶的研究进展 | 第15-24页 |
| 第三节 卡拉胶组成与结构的研究方法 | 第24-28页 |
| 第四节 卡拉胶及其降解产物的特殊生理活性 | 第28-32页 |
| 展望 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-40页 |
| 第二章 卡拉胶降解酶的制备及其酶学性质 | 第40-82页 |
| 第一节 卡拉胶降解菌株的筛选及诱变 | 第40-52页 |
| 1 材料与方法 | 第41-44页 |
| ·实验材料 | 第41-42页 |
| ·实验样品的采集与处理 | 第42页 |
| ·菌种的分离与筛选 | 第42-43页 |
| ·菌种的诱变 | 第43-44页 |
| 2 结果与分析 | 第44-51页 |
| ·卡拉胶降解菌的分离 | 第44-49页 |
| ·菌种诱变 | 第49-51页 |
| 3 讨论 | 第51-52页 |
| 第二节 Cytophaga sp.M2-4-4生长条件优化实验 | 第52-65页 |
| 1 材料与方法 | 第53-54页 |
| ·培养基成分的选择 | 第53-54页 |
| ·培养环境条件的选择 | 第54页 |
| ·正交试验设计 | 第54页 |
| ·菌种生长曲线和产酶曲线的测定 | 第54页 |
| 2 结果与分析 | 第54-65页 |
| ·M2-4-4菌株的生长情况分析 | 第54-56页 |
| ·培养基成分对M2-4-4菌株生长的影响 | 第56-60页 |
| ·培养环境条件的选择 | 第60-62页 |
| ·培养条件的正交试验设计 | 第62-64页 |
| ·M2-4-4的生长曲线 | 第64-65页 |
| 3 讨论 | 第65页 |
| 第三节 卡拉胶酶的基本酶学性质 | 第65-82页 |
| 1 材料与方法 | 第66-69页 |
| ·实验材料 | 第66-67页 |
| ·卡拉胶酶的分离与纯化 | 第67-68页 |
| ·卡拉胶酶的最适作用条件 | 第68-69页 |
| ·酶蛋白的稳定性实验 | 第69页 |
| 2 结果与分析 | 第69-77页 |
| ·酶的分离与纯化 | 第69-73页 |
| ·酶反应条件的研究 | 第73-76页 |
| ·酶的稳定性实验 | 第76-77页 |
| 3 讨论 | 第77-82页 |
| 第三章 新卡拉四、六糖的制备与结构分析 | 第82-108页 |
| 第一节 卡拉胶低聚糖的酶解制备与修饰 | 第82-89页 |
| 1 材料与方法 | 第82-86页 |
| ·实验材料 | 第82-83页 |
| ·卡拉胶降解酶的制备 | 第83页 |
| ·卡拉胶低聚糖的制备与纯化 | 第83-84页 |
| ·卡拉胶低聚糖的化学修饰 | 第84页 |
| ·低聚糖的分子量测定 | 第84-85页 |
| ·低聚糖的化学分析方法 | 第85-86页 |
| 2 结果与分析 | 第86-89页 |
| ·卡拉胶低聚糖的酶解制备 | 第86-87页 |
| ·卡拉胶低聚糖的化学修饰 | 第87-89页 |
| 第二节 新卡拉四、六糖的化学结构分析 | 第89-108页 |
| 1 材料与方法 | 第90-91页 |
| ·主要仪器 | 第90-91页 |
| ·低聚糖的组成和结构分析 | 第91页 |
| 2 结果与分析 | 第91-105页 |
| ·MALDI-TOF-MS分析 | 第91-94页 |
| ·卡拉胶低聚糖的红外图谱分析 | 第94-101页 |
| ·卡拉胶低聚糖的~(13)C-NMR图谱 | 第101-104页 |
| ·新卡拉四、六糖的结构确定 | 第104-105页 |
| 3 讨论 | 第105-108页 |
| 第四章 新卡拉四、六糖生物学活性的初步研究 | 第108-134页 |
| 第一节 新卡拉低聚糖的抗肿瘤活性实验 | 第109-115页 |
| 1 材料与方法 | 第109-111页 |
| ·实验材料 | 第109页 |
| ·新卡拉低聚糖的体外抗肿瘤试验 | 第109页 |
| ·新卡拉低聚糖的体内抗肿瘤活性 | 第109-110页 |
| ·相关指标的测定 | 第110-111页 |
| 2 结果与分析 | 第111-115页 |
| ·抗肿瘤活性分析 | 第111-112页 |
| ·新卡拉低聚糖对抗氧化酶的影响 | 第112-114页 |
| ·新卡拉低聚糖的体外抗肿瘤作用 | 第114-115页 |
| 第二节 新卡拉低聚糖的体外抗氧化活性 | 第115-119页 |
| 1 材料与方法 | 第115-117页 |
| ·实验材料 | 第115-116页 |
| ·低聚糖的抗脂质过氧化实验 | 第116页 |
| ·低聚糖对H_2O_2的清除作用 | 第116页 |
| ·低聚糖对.OH的清除作用 | 第116-117页 |
| ·低聚糖对O_2~-的清除作用 | 第117页 |
| 2 结果与分析 | 第117-119页 |
| ·低聚糖的抗脂质过氧化效果 | 第117-118页 |
| ·低聚糖对H_2O_2的清除效果 | 第118页 |
| ·低聚糖对.OH的清除效果 | 第118-119页 |
| ·低聚糖对O_2~-的清除效果 | 第119页 |
| 第三节 新卡拉低聚糖的免疫调节作用 | 第119-124页 |
| 1 材料与方法 | 第119-121页 |
| ·实验材料 | 第119-120页 |
| ·实验动物的处理 | 第120页 |
| ·巨噬细胞免疫功能的检测 | 第120-121页 |
| ·白细胞数量的检测 | 第121页 |
| ·血清溶菌酶活力的测定 | 第121页 |
| 2 结果与分析 | 第121-124页 |
| ·新卡拉低聚糖对免疫细胞的调节作用 | 第121-122页 |
| ·新卡拉低聚糖对血清溶菌酶的影响 | 第122-123页 |
| ·新卡拉低聚糖对免疫器官重量的影响 | 第123-124页 |
| 第四节 新卡拉低聚糖对细菌生长的影响 | 第124-134页 |
| 1 材料与方法 | 第124-126页 |
| ·实验材料 | 第124-125页 |
| ·固体平板检测抑菌圈的大小 | 第125页 |
| ·最小抑菌浓度的测定 | 第125-126页 |
| ·对双歧杆菌生长的影响 | 第126页 |
| 2 结果与分析 | 第126-128页 |
| ·新卡拉低聚糖的抑菌作用 | 第126-127页 |
| ·新卡拉低聚糖对双歧杆菌的促生长效果 | 第127-128页 |
| 3 讨论 | 第128-134页 |
| 论文总结 | 第134-138页 |
| 后期工作设想 | 第138-139页 |
| 博士论文工作期间发表论文情况 | 第139-140页 |
| 致谢 | 第140页 |