摘要 | 第1-5页 |
ABSTRACT | 第5-10页 |
1 前言 | 第10-33页 |
·研究背景 | 第10-11页 |
·Kefir | 第11-17页 |
·Kefir的起源 | 第11-12页 |
·kefir粒 | 第12-13页 |
·Kefir中的生物活性成分 | 第13-15页 |
·kefir的保健功能 | 第15-17页 |
·国内外乳酸菌EPS研究现状 | 第17-28页 |
·产胞外多糖的乳酸菌 | 第17-18页 |
·乳酸菌产胞外多糖的分类、化学组成和结构 | 第18-19页 |
·乳酸菌EPS的生理功能 | 第19-20页 |
·乳酸菌EPS的生物合成及其主要影响因素 | 第20-26页 |
·乳酸菌EPS生物合成的基因学 | 第26-27页 |
·乳酸菌胞外多糖的应用研究 | 第27-28页 |
·研究胞外多糖的方法学 | 第28-30页 |
·产EPS显型的检测 | 第28页 |
·产EPS的LAB菌株的筛选 | 第28页 |
·EPS的分离方法 | 第28-29页 |
·EPS产量的量化 | 第29页 |
·EPS的一级和立体结构测定 | 第29-30页 |
·在食品添加剂方面的应用 | 第30-31页 |
·EPS作为增稠剂 | 第30页 |
·EPS作为凝胶剂 | 第30页 |
·EPS作为粘性发酵剂 | 第30-31页 |
·EPS作为药物及保健食品 | 第31页 |
·EPS作为益生素应用 | 第31-32页 |
·本课题研究的主要内容及意义 | 第32-33页 |
2 材料与方法 | 第33-43页 |
·实验材料 | 第33-35页 |
·菌种 | 第33页 |
·培养基 | 第33页 |
·主要原材料与试剂 | 第33-34页 |
·主要仪器 | 第34-35页 |
·实验方法 | 第35-43页 |
·乳酸菌的活化 | 第35页 |
·高产胞外多糖乳酸菌的筛选 | 第35-36页 |
·乳酸菌菌株的鉴定 | 第36-37页 |
·EPS生物合成条件的研究 | 第37-38页 |
·EPS分离工艺的研究 | 第38-39页 |
·EPS的纯化 | 第39-40页 |
·EPS结构分析 | 第40-41页 |
·EPS的微观结构 | 第41页 |
·产胞外多糖乳酸菌菌株KF5对酸奶品质的影响 | 第41-42页 |
·EPS对病原菌的抑制作用 | 第42-43页 |
3 结果与讨论 | 第43-63页 |
·高产胞外多糖菌株筛选及培养基的确定 | 第43-44页 |
·高产胞外多糖菌株筛选结果 | 第43-44页 |
·苯酚-硫酸法标准曲线 | 第44页 |
·菌株KF5的鉴定 | 第44-46页 |
·菌株 | 第44-45页 |
·菌株KF5的生理生化鉴定结果 | 第45-46页 |
·菌株KF5产胞外多糖培养条件的优化 | 第46-50页 |
·菌株KF5生长曲线的测定 | 第46-47页 |
·培养时间对EPS合成的影响 | 第47页 |
·培养方式对EPS合成的影响 | 第47-48页 |
·接种量对EPS合成的影响 | 第48页 |
·培养基初始pH对EPS合成的影响 | 第48-49页 |
·菌株KF5在最适条件下的生长和胞外多糖生物合成条件 | 第49-50页 |
·胞外多糖分离工艺研究 | 第50-52页 |
·不同乙醇浓度对分离效果的影响 | 第50-51页 |
·发酵液与乙醇的体积比对分离效果的影响 | 第51页 |
·不同醇沉时间对分离效果的影响 | 第51-52页 |
·不同醇沉温度对提取效果的比较 | 第52页 |
·胞外多糖的纯化 | 第52-53页 |
·考马斯亮蓝法蛋白测定标准曲线 | 第52-53页 |
·不同除蛋白方法的比较 | 第53页 |
·TCA终浓度的确定 | 第53页 |
·胞外多糖分离纯化工艺流程图 | 第53-54页 |
·EPS的结构分析 | 第54-57页 |
·薄层层析(TLC) | 第54-55页 |
·胞外多糖傅立叶红外光谱分析结果 | 第55-56页 |
·气象色谱法分析多糖的单糖组成及摩尔比 | 第56-57页 |
·EPS的微观结构 | 第57-58页 |
·菌株KF5的对酸奶品质的影响 | 第58-61页 |
·菌株KF5的发酵性能 | 第58页 |
·发酵乳在发酵过程中酸度和pH的变化 | 第58-59页 |
·在4℃冷藏期发酵乳中菌株的产酸能力 | 第59-60页 |
·薪度的测定 | 第60-61页 |
·保藏期乳清析出率的变化 | 第61页 |
·胞外多糖对病原菌的抑制作用 | 第61-63页 |
4 结论 | 第63-64页 |
5 展望 | 第64-65页 |
6 参考文献 | 第65-75页 |
7 论文发表情况 | 第75-76页 |
8 致谢 | 第76页 |