摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5页 |
第一章 文献综述 | 第9-16页 |
1.1 小分子簇水 | 第9-10页 |
1.2 天然产物及其生物转化 | 第10-11页 |
1.3 黄酮类化合物 | 第11-14页 |
1.3.1 芦丁 | 第12页 |
1.3.1.1 芦丁的来源及理化性质 | 第12页 |
1.3.1.2 芦丁的生理活性及药用价值 | 第12页 |
1.3.2 异槲皮苷 | 第12-14页 |
1.3.2.1 异槲皮苷的来源及理化性质 | 第12-13页 |
1.3.2.2 异槲皮苷的生理活性及药用价值 | 第13页 |
1.3.2.3 异槲皮苷制备的研究进展 | 第13-14页 |
1.4 芦丁水解糖苷酶研究进展 | 第14-15页 |
1.5 本论文的主要研究内容 | 第15-16页 |
第二章 材料与方法 | 第16-27页 |
2.1 实验材料 | 第16-18页 |
2.1.1 菌种 | 第16页 |
2.1.2 试剂 | 第16-17页 |
2.1.3 设备 | 第17-18页 |
2.2 实验方法 | 第18-27页 |
2.2.1 簇水pH值的测定 | 第18页 |
2.2.2 菌种的液体发酵 | 第18-19页 |
2.2.2.1 培养基的配制 | 第18页 |
2.2.2.2 菌体传代及培养方法 | 第18-19页 |
2.2.3 酶液的制备和提取 | 第19-20页 |
2.2.3.1 缓冲液的配制 | 第19页 |
2.2.3.2 酶液的提取 | 第19-20页 |
2.2.4 酶活力测定方法 | 第20页 |
2.2.5 薄层层析法(TLC) | 第20-21页 |
2.2.6 糖的检测方法 | 第21-22页 |
2.2.6.1 DNS法测定还原糖的含量 | 第21-22页 |
2.2.6.2 芦丁的酸水解 | 第22页 |
2.2.7 产酶菌种的筛选及其培养条件 | 第22页 |
2.2.7.1 产酶菌种的筛选 | 第22页 |
2.2.7.2 产酶菌种诱导物的筛选 | 第22页 |
2.2.7.3 诱导物比例的筛选 | 第22页 |
2.2.8 酶反应条件的优化 | 第22-23页 |
2.2.8.1 粗酶液反应pH的确定 | 第23页 |
2.2.8.2 粗酶液反应温度的确定 | 第23页 |
2.2.8.3 粗酶液反应底物浓度的确定 | 第23页 |
2.2.8.4 粗酶液反应时间的确定 | 第23页 |
2.2.9 芦丁-α-鼠李糖苷酶的分离提纯及分子量的测定 | 第23-25页 |
2.2.9.1 电泳试剂的配制 | 第23-24页 |
2.2.9.2 芦丁-α-鼠李糖苷酶的分离提纯 | 第24页 |
2.2.9.2 分子量的测定 | 第24-25页 |
2.2.10 芦丁-α-鼠李糖苷酶酶性质的研究 | 第25-27页 |
2.2.10.1 酶反应的最适pH | 第25页 |
2.2.10.2 酶的pH稳定性 | 第25-26页 |
2.2.10.3 酶反应的最适温度 | 第26页 |
2.2.10.4 酶的温度稳定性 | 第26-27页 |
第三章 结果与讨论 | 第27-40页 |
3.1 小分子簇水pH值 | 第27页 |
3.2 芦丁在不同pH值下的溶解度比较 | 第27-28页 |
3.3 产酶菌种的筛选及其培养条件 | 第28-30页 |
3.3.1 产酶菌种的筛选 | 第28页 |
3.3.2 产酶诱导物的筛选 | 第28-29页 |
3.3.3 诱导物比例的筛选 | 第29-30页 |
3.4 粗酶反应条件的优化 | 第30-33页 |
3.4.1 粗酶液反应pH的确定 | 第30-31页 |
3.4.2 粗酶液反应温度的确定 | 第31页 |
3.4.3 粗酶液反应底物浓度的确定 | 第31-33页 |
3.5 芦丁-α-鼠李糖苷酶的分离纯化与分子量测定 | 第33-36页 |
3.5.1 芦丁-α-鼠李糖苷酶的提纯与分离 | 第33-35页 |
3.5.2 提纯酶蛋白分子量的确定 | 第35-36页 |
3.6 提纯酶性质的研究 | 第36-40页 |
3.6.1 提纯酶pH值的确定 | 第36-37页 |
3.6.2 提纯酶pH值的稳定性 | 第37页 |
3.6.3 提纯酶反应温度 | 第37-38页 |
3.6.4 提纯酶反应温度的稳定性 | 第38-40页 |
第四章 结论 | 第40-41页 |
参考文献 | 第41-43页 |
致谢 | 第43页 |