| 摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 缩略词表 | 第13-14页 |
| 第一章 SlZF3调控开花时间的机理研究 | 第14-56页 |
| 1.课题的提出和研究背景 | 第14页 |
| 2 文献综述 | 第14-27页 |
| 2.1 植物开花的主要调控途径 | 第14-19页 |
| 2.1.1 光周期途径 | 第14-15页 |
| 2.1.2 春化途径 | 第15-16页 |
| 2.1.3 自主途径 | 第16-17页 |
| 2.1.4 温度途径 | 第17-18页 |
| 2.1.4.1 低温途径 | 第17页 |
| 2.1.4.2 高温途径 | 第17-18页 |
| 2.1.5 GA途径 | 第18页 |
| 2.1.6 GA途径与光周期途径的互作 | 第18-19页 |
| 2.1.7 年龄途径 | 第19页 |
| 2.2 光质对植物开花时间的调控 | 第19-20页 |
| 2.3 FT的结构、功能及其作用模式 | 第20-21页 |
| 2.4 FT的转录调控 | 第21-22页 |
| 2.5 CO的转录调控和转录后调控 | 第22-24页 |
| 2.5.1 CO的转录调控 | 第22-23页 |
| 2.5.2 CO的转录后调控 | 第23-24页 |
| 2.6 锌指蛋白与植物开花 | 第24-27页 |
| 2.6.1 锌指蛋白概述 | 第24页 |
| 2.6.2 锌指蛋白参与植物开花 | 第24-27页 |
| 3 本研究的目的和意义 | 第27-28页 |
| 4 材料与方法 | 第28-34页 |
| 4.1 植物材料与生长条件 | 第28页 |
| 4.2 载体构建以及转基因材料创建 | 第28-29页 |
| 4.3 GUS染色 | 第29页 |
| 4.4 亚细胞定位 | 第29-30页 |
| 4.5 转录组分析 | 第30页 |
| 4.6 酵母双杂交分析 | 第30页 |
| 4.7 荧光素酶瞬时表达分析 | 第30-31页 |
| 4.8 免疫共沉淀和蛋白印迹分析 | 第31-32页 |
| 4.9 凝胶迁移实验(EMSA) | 第32页 |
| 4.10 双荧光酶活性测定 | 第32-34页 |
| 5 结果 | 第34-49页 |
| 5.1 SlZF3是开花时间的负调控因子 | 第34-38页 |
| 5.2 SlZF3的表达受光周期影响 | 第38-40页 |
| 5.3 SlZF3/ZAT12与SlCO1/AtCO直接互作 | 第40-42页 |
| 5.4 EAR的作用及SlZF3与CO的遗传互作 | 第42页 |
| 5.5 SFT/AtFT是SlZF3/ZAT12下游靶基因 | 第42-49页 |
| 6 讨论 | 第49-56页 |
| 6.1 SlZF3/ZAT12是开花负调控因子 | 第51-52页 |
| 6.2 SlZF3/ZAT12可以抑制SlCO1/AtCO结合SFT/AtFT的活性 | 第52-54页 |
| 6.3 EAR结构域在SlZF3/ZAT12调控开花中的作用 | 第54-56页 |
| 第二章 Folb2调控植物根发育的机理研究 | 第56-108页 |
| 1 课题的提出以及研究背景 | 第56页 |
| 2 文献综述 | 第56-72页 |
| 2.1 植物根系的多样性 | 第56-58页 |
| 2.2 植物主根的发育 | 第58-65页 |
| 2.2.1 主根的结构 | 第58页 |
| 2.2.2 胚根的形成 | 第58-59页 |
| 2.2.3 主根根尖分生组织(RAM) | 第59页 |
| 2.2.4 RAM发育的分子调控机制 | 第59-62页 |
| 2.2.5 激素对植物根发育的影响 | 第62-65页 |
| 2.2.5.1 生长素对根发育的影响 | 第62-64页 |
| 2.2.5.2 其他激素对根发育的影响 | 第64-65页 |
| 2.3 侧根和不定根的发育 | 第65-68页 |
| 2.3.1 侧根和不定根的结构异同 | 第65页 |
| 2.3.2 激素调控侧根和不定根发育 | 第65-68页 |
| 2.3.2.1 生长素调控侧根和不定根发育 | 第65-66页 |
| 2.3.2.2 其他激素调控侧根和不定根发育 | 第66-68页 |
| 2.4 叶酸 | 第68-71页 |
| 2.4.1 叶酸概述 | 第68-69页 |
| 2.4.2 叶酸的合成 | 第69-70页 |
| 2.4.3 叶酸合成的调控 | 第70页 |
| 2.4.4 叶酸与根的发育 | 第70-71页 |
| 2.5 LBD家族调控植物根的发育 | 第71-72页 |
| 2.5.1 LBD家族概述 | 第71页 |
| 2.5.2 LBD家族成员与根的发育 | 第71-72页 |
| 3 本课题的目的和意义 | 第72-74页 |
| 4 实验材料和方法 | 第74-79页 |
| 4.1 实验材料及培养条件 | 第74页 |
| 4.2 folb2突变体表型鉴定 | 第74页 |
| 4.3 相关载体构建及转基因材料创建 | 第74-75页 |
| 4.4 RNA提取以及荧光定量PCR | 第75页 |
| 4.5 转录组分析 | 第75页 |
| 4.6 进化树分析 | 第75页 |
| 4.7 细胞生物学研究方法 | 第75-76页 |
| 4.8 原生质体制备以及亚细胞定位 | 第76页 |
| 4.9 GUS报告系统载体构建及化学组织染色 | 第76-77页 |
| 4.10 生长素含量测定 | 第77页 |
| 4.11 叶酸提取和测定 | 第77-79页 |
| 5 结果 | 第79-102页 |
| 5.1 AtFolb2突变导致主根生长受抑制、不定根产生 | 第79-84页 |
| 5.2 AtFolB2/SlFolB基因特点分析 | 第84页 |
| 5.3 二氢新碟呤醛缩酶(DHNA)参与叶酸的合成 | 第84-87页 |
| 5.4 外源5-F-THF可恢复folb2表型 | 第87-90页 |
| 5.5 AtFolb2影响生长素的运输和分布 | 第90-98页 |
| 5.6 RNA干涉LBD41能恢复folb2突变体根缺陷表型 | 第98-102页 |
| 6 讨论 | 第102-107页 |
| 6.1 叶酸在根尖分生区(RAM)维持中的作用 | 第102-104页 |
| 6.2 叶酸参与调控生长素在根中的运输和分布 | 第104-107页 |
| 7 结论和展望 | 第107-108页 |
| 参考文献 | 第108-125页 |
| 附录 | 第125-129页 |
| 附录1 载体构建引物列表 | 第125-126页 |
| 附录2 Q-PCR引物列表 | 第126-127页 |
| 附录3 转录组部分数据 | 第127-129页 |
| 作者简介 | 第129-130页 |
| 致谢 | 第130-132页 |
