英文缩略语表 | 第7-9页 |
前言 | 第9-11页 |
中文摘要 | 第11-14页 |
Abstract | 第14-16页 |
第一部分 内质网应激对C57BL/6小鼠肺纤维化模型的影响 | 第17-59页 |
前言 | 第17-18页 |
一、C57BL/6小鼠肺纤维化及肺内质网应激模型的建立 | 第18-32页 |
1、材料与方法 | 第18-28页 |
1.1 实验材料 | 第18-22页 |
1.2 实验动物分组与技术路线 | 第22-23页 |
1.3 实验方法 | 第23-27页 |
1.4 统计学分析 | 第27-28页 |
2、实验结果 | 第28-31页 |
2.1 一般情况观察 | 第28-29页 |
2.2 肺组织病理 | 第29-30页 |
2.3 肺组织羟脯氨酸测定 | 第30页 |
2.4 支气管肺泡灌洗液结果 | 第30-31页 |
3、讨论 | 第31-32页 |
二、内质网应激通路在肺纤维化动物模型中的作用 | 第32-45页 |
1、材料与方法 | 第32-38页 |
1.1 实验材料、实验动物分组与技术路线 | 第32页 |
1.2 实验方法 | 第32-38页 |
1.3 统计学分析 | 第38页 |
2、实验结果 | 第38-43页 |
2.1 肺组织病理切片Ashcroft评分 | 第38页 |
2.2 肺组织羟脯氨酸测定 | 第38-39页 |
2.3 BALF细胞计数 | 第39页 |
2.4 免疫组织化学 | 第39-41页 |
2.5 Real-time PCR检测小鼠肺组织ERS及纤维化相关因子mRNA表达 | 第41-42页 |
2.6 TUNEL法检测肺泡上皮凋亡 | 第42-43页 |
3、讨论 | 第43-45页 |
三、SALUBRINAL阻断内质网应激中PERK通路对肺纤维化的作用 | 第45-58页 |
1、材料与方法 | 第45-50页 |
1.1 实验材料 | 第45页 |
1.2 实验动物分组 | 第45页 |
1.3 实验方法 | 第45-50页 |
1.4 统计学分析 | 第50页 |
2、实验结果 | 第50-57页 |
2.1 一般情况观察 | 第50页 |
2.2 肺组织病理 | 第50-51页 |
2.3 肺组织羟脯氨酸测定 | 第51-52页 |
2.4 BALF细胞计数 | 第52页 |
2.5 免疫组织化学 | 第52-54页 |
2.6 Western blot方法检测小鼠肺组织ERS及纤维化相关因子mRNA表达 | 第54-56页 |
2.7 Real-time PCR方法检测小鼠肺组织ERS及纤维化相关因子mRNA表达 | 第56页 |
2.8 ELISA方法检测小鼠BALF中TGF-p及MMP-2蛋白表达 | 第56-57页 |
3、讨论 | 第57-58页 |
小结 | 第58-59页 |
第二部分 内质网应激在特发性肺纤维化患者中的作用研究 | 第59-69页 |
前言 | 第59页 |
1、材料与方法 | 第59-62页 |
1.1 实验材料 | 第59-61页 |
1.2 患者分组与技术路线 | 第61页 |
1.3 实验方法 | 第61-62页 |
1.4 统计学分析 | 第62页 |
2、实验结果 | 第62-66页 |
2.1 吡非尼酮研究组患者一般情况 | 第62页 |
2.2 吡非尼酮组治疗前后临床症状评分变化 | 第62页 |
2.3 M30及M65在IPF患者中的表达水平 | 第62-65页 |
2.4 TUNEL检测肺纤维化上皮凋亡表达 | 第65页 |
2.5 肺纤维化、上皮细胞凋亡标记物在IPF患者肺内表达 | 第65-66页 |
3、讨论 | 第66-68页 |
4、结论 | 第68-69页 |
第三部分 连花清瘟制剂临床用药安全性的系统评价 | 第69-76页 |
前言 | 第69页 |
1、资料和方法 | 第69-70页 |
1.1 纳入标准 | 第69页 |
1.2 排除标准 | 第69页 |
1.3 文献检索 | 第69-70页 |
1.4 资料提取 | 第70页 |
1.5 按干预措施进行亚组分析 | 第70页 |
1.6 采用Stata 11.0软件进行数据分析 | 第70页 |
2、结果 | 第70-74页 |
2.1 文献检索结果 | 第70-71页 |
2.2 纳入研究文献的基本特征 | 第71-72页 |
2.3 安全性评价 | 第72-74页 |
3、 讨论 | 第74-76页 |
参考文献 | 第76-82页 |
综述:内质网应激与特发性肺纤维化 | 第82-89页 |
参考文献 | 第85-89页 |
个人简历 | 第89-90页 |
致谢 | 第90-91页 |