摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-10页 |
英文缩略语 | 第11-17页 |
第一部分 双心室起搏改善失同步化心力衰竭犬左心室收缩功能的效果 | 第17-35页 |
1 前言 | 第17-19页 |
2 材料和方法 | 第19-28页 |
2.1 主要仪器、耗材及药品 | 第20-21页 |
2.1.1 主要仪器 | 第20页 |
2.1.2 主要药品 | 第20-21页 |
2.2 动物模型建立 | 第21-25页 |
2.2.1 研究对象 | 第21页 |
2.2.2 犬失同步心力衰竭模型的的建立 | 第21-23页 |
2.2.3 犬epi-BIVP模型建立 | 第23-24页 |
2.2.4 犬endo-BIVP模型制作 | 第24-25页 |
2.3 心电图检查 | 第25页 |
2.4 超声心动图检测左心室功能及收缩同步性 | 第25-27页 |
2.4.1 仪器 | 第25页 |
2.4.2 图像采集 | 第25-26页 |
2.4.3 图像分析 | 第26-27页 |
2.5 统计学分析 | 第27-28页 |
3 实验结果 | 第28-32页 |
3.1 实验犬一般情况 | 第28页 |
3.2 各组之间实验犬心电图的变化 | 第28页 |
3.3 各组之间实验犬左心室功能及收缩同步性的变化 | 第28-32页 |
3.3.1 评价DHF模型建立即刻犬左心室功能及收缩同步性的变化 | 第28页 |
3.3.2 比较CT组犬与DHF犬左心室功能及收缩同步性 | 第28-29页 |
3.3.3 比较DHF犬与BIVP犬左心室及收缩同步性评价 | 第29-32页 |
4 讨论 | 第32-34页 |
5 结论 | 第34-35页 |
第二部分 双心室起搏改善失同步化心力衰竭犬左心室收缩功能的初步机制探讨 | 第35-57页 |
1 前言 | 第35-36页 |
2 材料和方法 | 第36-47页 |
2.1 主要试剂及实验仪器 | 第37-42页 |
2.1.1 主要试剂 | 第37页 |
2.1.2 主要仪器 | 第37-38页 |
2.1.3 常用试剂配制 | 第38-42页 |
2.2 实验方法 | 第42-46页 |
2.2.1 犬心肌标本提取与保存 | 第42页 |
2.2.2 心肌组织蛋白提取与定量 | 第42-43页 |
2.2.3 WesternBlot测犬心肌组织SERCA2A、NCX及Cav1.2蛋白表达水平 | 第43-44页 |
2.2.4 心肌组织RNA提取 | 第44-45页 |
2.2.5 检测样本总RNA的浓度 | 第45页 |
2.2.6 反转录获取组织cDNA | 第45页 |
2.2.7 实时荧光定量分析 | 第45-46页 |
2.3 统计学分析 | 第46-47页 |
3 结果 | 第47-54页 |
3.1 CT组、DHF组、epi-BIVP组及endo-BIVP组犬左心室整体Ca~(2+)循环相关蛋白表达变化 | 第47-50页 |
3.1.1 CT组、DHF组、epi-BIVP组及endo-BIVP组犬左心室整体Cav1.2表达变化 | 第47-48页 |
3.1.2 CT组、DHF组、epi-BIVP组及endo-BIVP组犬左心室整体RyR2表达变化 | 第48页 |
3.1.3 CT组、DHF组、epi-BIVP组及endo-BIVP组犬左心室NCX表达变化 | 第48-49页 |
3.1.4 CT组、DHF组、epi-BIVP组及endo-BIVP组犬左心室SERCA2A的表达变化 | 第49-50页 |
3.2 CT组、DHF组、epi-BIVP组及endo-BIVP组犬左心室局部SERCA2A表达变化 | 第50-54页 |
3.2.1 CT组、DHF组、epi-BIVP组及endo-BIVP组犬左心室各壁间SERCA2A表达变化 | 第50-52页 |
3.2.2 CT组、DHF组、epi-BIVP组及endo-BIVP组犬左心室侧壁SERCA2A表达变化 | 第52-54页 |
4 讨论 | 第54-56页 |
5 结论 | 第56-57页 |
本研究创新性的自我评价 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-63页 |
综述 | 第63-80页 |
参考文献 | 第68-80页 |
博士期间取得成绩 | 第80-81页 |
致谢 | 第81-82页 |
个人简介 | 第82页 |