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一种R-扁桃酸脱氢酶的酶学性质及其辅因子循环的研究

摘要第5-7页
Abstract第7-8页
符号与缩略语说明第9-13页
1 绪论第13-20页
    1.1 扁桃酸研究状况第13-15页
        1.1.1 手性物质第13-14页
        1.1.2 手性扁桃酸第14页
        1.1.3 手性扁桃酸的制备第14-15页
    1.2 生物酶法拆分技术第15-16页
        1.2.1 生物酶法拆分的概念和特点第15页
        1.2.2 R-扁桃酸脱氢酶第15-16页
    1.3 NAD~+的再生第16-18页
        1.3.1 化学法再生NAD~+第16页
        1.3.2 电化学法再生NAD~+第16页
        1.3.3 光化学法再生NAD~+第16-17页
        1.3.4 酶法再生NAD~+第17-18页
    1.4 本研究目的和意义第18-20页
2 R-扁桃酸脱氢酶的提取及其酶学性质的研究第20-36页
    2.1 引言第20页
    2.2 实验试剂与材料第20-22页
        2.2.1 实验材料第20页
        2.2.2 实验试剂第20-21页
        2.2.3 实验仪器与设备第21页
        2.2.4 培养基第21页
        2.2.5 菌种保藏方法第21-22页
    2.3 实验方法第22-29页
        2.3.1 目的菌株的筛选及16S rDNA鉴定第22页
        2.3.2 菌体形态的电子显微镜观察第22页
        2.3.3 RMDH的提取与纯化第22-23页
        2.3.4 酶活及蛋白含量的测定第23-25页
        2.3.5 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳第25-26页
        2.3.6 RMDH酶学性质的测定第26-29页
    2.4 实验结果第29-35页
        2.4.1 产RMDH菌株透射电子显微镜观察第29页
        2.4.2 RMDH分离纯化结果第29-31页
        2.4.3 RMDH酶学性质第31-35页
    2.5 本章小结第35-36页
3 NADH脱氢酶与漆酶偶联进行NAD~+循环的研究第36-48页
    3.1 引言第36-37页
    3.2 实验试剂与材料第37页
        3.2.1 实验试剂第37页
        3.2.2 实验材料第37页
        3.2.3 培养基第37页
        3.2.4 菌种保藏方法第37页
    3.3 实验方法第37-42页
        3.3.1 目的菌株的筛选及16S rDNA鉴定第37-38页
        3.3.2 测定NADH及NAD~+的标准曲线第38页
        3.3.3 NADH脱氢酶的提取与纯化第38-39页
        3.3.4 漆酶的提取与纯化第39页
        3.3.5 酶活的测定第39-40页
        3.3.6 NADH脱氢酶酶学性质的测定第40-41页
        3.3.7 NADH脱氢酶与漆酶的偶联第41-42页
    3.4 结果与讨论第42-47页
        3.4.1 NADH及NAD~+标准曲线第42-43页
        3.4.2 NADH脱氢酶酶学性质第43-45页
        3.4.3 NADH脱氢酶与漆酶偶联最适pH与最适温度及双酶在最适条件下稳定性第45-46页
        3.4.4 双酶偶联催化生成NAD~+第46-47页
    3.5 本章小结第47-48页
4 RMDH与NADH脱氢酶的偶联第48-53页
    4.1 引言第48页
    4.2 实验试剂与材料第48-49页
        4.2.1 实验试剂第48-49页
        4.2.2 实验材料第49页
    4.3 实验方法第49-50页
        4.3.1 测定扁桃酸,苯乙酮酸的标准曲线第49页
        4.3.2 RMDH与NADH脱氢酶偶联实验第49-50页
    4.4 结果与讨论第50-51页
        4.4.1 扁桃酸,苯乙酮酸的标准曲线第50页
        4.4.2 双酶偶联最适反应pH第50-51页
        4.4.3 双酶偶联最适反应温度第51页
    4.5 本章小结第51-53页
5 结论、问题与展望第53-55页
    5.1 结论第53页
    5.2 问题第53-54页
    5.3 展望第54-55页
致谢第55-56页
参考文献第56-62页
附录第62页

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