| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语/符号说明 | 第14-16页 |
| 前言 | 第16-20页 |
| 研究现状、成果 | 第16-18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-20页 |
| 一、顺铂联合无血清培养法筛选肿瘤干细胞 | 第20-42页 |
| 1.1 实验材料 | 第20-22页 |
| 1.1.1 细胞株 | 第20页 |
| 1.1.2 主要试剂和材料 | 第20-21页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第21页 |
| 1.1.4 主要试剂配制 | 第21-22页 |
| 1.2 实验方法 | 第22-30页 |
| 1.2.1 细胞培养 | 第22-23页 |
| 1.2.2 化疗药物筛选细胞 | 第23页 |
| 1.2.3 无血清培养基培养悬浮球细胞 | 第23-24页 |
| 1.2.4 CCK-8 法绘制生长曲线 | 第24页 |
| 1.2.5 平板克隆实验 | 第24页 |
| 1.2.6 流式细胞仪SP检测 | 第24-25页 |
| 1.2.7 RT-PCR技术检测干细胞标志物表达水平 | 第25-28页 |
| 1.2.8 Western-blot检测干细胞肿瘤标志物蛋白表达水平 | 第28-29页 |
| 1.2.9 统计学方法 | 第29-30页 |
| 1.3 结果 | 第30-38页 |
| 1.3.1 形态学比较 | 第30页 |
| 1.3.2 生长曲线 | 第30-32页 |
| 1.3.3 平板克隆 | 第32-33页 |
| 1.3.4 流式细胞技术检测SP细胞比例结果 | 第33-34页 |
| 1.3.5 RT-PCR检测干细胞标志物表达水平 | 第34-35页 |
| 1.3.6 Western-blot检测干细胞标志物表达水平 | 第35-38页 |
| 1.4 讨论 | 第38-41页 |
| 1.5 小结 | 第41-42页 |
| 二、miR-192对肺腺癌肿瘤干细胞的调控作用 | 第42-69页 |
| 2.1 实验材料 | 第42-44页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第42页 |
| 2.1.2 主要试剂和材料 | 第42-43页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第43页 |
| 2.1.4 主要试剂配制 | 第43-44页 |
| 2.2 实验方法 | 第44-47页 |
| 2.2.1 RT-PCR检测干细胞中miR-192的表达 | 第44-46页 |
| 2.2.2 实验分组 | 第46页 |
| 2.2.3 细胞转染 | 第46页 |
| 2.2.4 RT-PCR检查转染效果 | 第46页 |
| 2.2.5 悬浮培养成球实验 | 第46-47页 |
| 2.2.6 CCK-8 法绘制生长曲线 | 第47页 |
| 2.2.7 流式细胞技术检测SP细胞比例 | 第47页 |
| 2.2.8 流式细胞技术检测细胞周期 | 第47页 |
| 2.2.9 RT-PCR及western-blot检测干细胞肿瘤标志物表达水平 | 第47页 |
| 2.2.10统计学方法 | 第47页 |
| 2.3 结果 | 第47-64页 |
| 2.3.1 miR-192表达量 | 第47-48页 |
| 2.3.2 RT-PCR检测转染效率 | 第48-50页 |
| 2.3.3 成球率比较 | 第50-53页 |
| 2.3.4 生长曲线 | 第53-54页 |
| 2.3.5 SP细胞比例 | 第54-55页 |
| 2.3.6 细胞周期比较 | 第55-56页 |
| 2.3.7 RT-PCR检测干细胞标志物表达水平 | 第56-60页 |
| 2.3.8 Western-blot检测干细胞标志物表达水平 | 第60-64页 |
| 2.4 讨论 | 第64-67页 |
| 2.5 小结 | 第67-69页 |
| 全文结论 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-80页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第80-81页 |
| 综述 肺癌肿瘤干细胞相关通路的研究进展 | 第81-92页 |
| 综述参考文献 | 第87-92页 |
| 致谢 | 第92-93页 |
| 个人简历 | 第93页 |
