| 中文摘要 | 第6-11页 |
| Abstract | 第11-15页 |
| 第一部分 探讨TET2基因和TET2基因突变在急性髓系白血病中的检测及其临床意义 | 第16-31页 |
| 1、引言 | 第16-17页 |
| 2、材料和方法 | 第17-21页 |
| 2.1 研究对象 | 第17-18页 |
| 2.2 实验仪器与试剂 | 第18-19页 |
| 2.3 实验方法 | 第19-21页 |
| 3、结果 | 第21-27页 |
| 3.1 患者的特点和临床结果 | 第21-23页 |
| 3.2 PCR扩增产物TET2琼脂糖凝胶电泳结果 | 第23-24页 |
| 3.3 结果分析 | 第24-27页 |
| 4、讨论 | 第27-29页 |
| 5、结论 | 第29-31页 |
| 第二部分 17-DMAG抑制白血病细胞增殖并诱导其凋亡 | 第31-49页 |
| 1、引言 | 第31-32页 |
| 2、试剂与仪器 | 第32-33页 |
| 2.1 试剂与器材 | 第32-33页 |
| 3、方法 | 第33-41页 |
| 3.1 白血病细胞HL-60 细胞株培养及处理 | 第33-34页 |
| 3.2 MTT法检测细胞存活率： | 第34-35页 |
| 3.3 白血病细胞HL-60 集落形成实验检测对细胞增殖抑制作用 | 第35-36页 |
| 3.4 Annexin V-FITC/PI双染法流式细胞术检测细胞凋亡 | 第36页 |
| 3.5 线粒体膜电位检测试剂盒(JC-1)检测白血病细胞凋亡 | 第36-38页 |
| 3.6 蛋白抽提和Western blotting分析 | 第38-40页 |
| 3.7 统计学处理 | 第40-41页 |
| 4、结果 | 第41-46页 |
| 4.1 MTT法检测 17-DMAG对白血病细胞株HL-60 的增值抑制作用 | 第41-42页 |
| 4.2 使用细胞克隆形成实验检测 17-DMAG对于白血病细胞株HL-60 的的抑制作用 | 第42-43页 |
| 4.3. 使用Annexin V/PI染色检测 17-DMAG诱导白血病细胞株HL-60 细胞凋亡的作用 | 第43-45页 |
| 4.4.JC-1 染色法检测 17-DMAG作用人白血病HL-60 细胞的凋亡情况 | 第45页 |
| 4.5.17-DMAG对白血病细胞株HL-60 Bcl-2 信号通路的影响 | 第45-46页 |
| 5、讨论 | 第46-48页 |
| 6、结论 | 第48-49页 |
| 第三部分 TET2基因能增强 17-DMAG对人急性髓系白血病HL-60 细胞株凋亡及对信号通路ＰＩ３Ｋ／ＡＫＴ信号影响研究 | 第49-72页 |
| 1、引言 | 第49页 |
| 2、试剂和仪器 | 第49-62页 |
| 2.1 实验材料 | 第49-50页 |
| 2.2 试剂 | 第50-51页 |
| 2.3 主要器材 | 第51-52页 |
| 2.4 实验方法 | 第52-62页 |
| 3、结果 | 第62-69页 |
| 3.1 TET2蛋白在白血病HL-60 细胞系和 293T中的表达 | 第62-63页 |
| 3.2 白血病细胞HL-60 转染TET2前后细胞生长曲线变化 | 第63-65页 |
| 3.3 转染过表达质粒后的细胞凋亡分析 | 第65页 |
| 3.4 MTT法检测TET2转染后白血病细胞株HL-60 的药物敏感性变化 | 第65-67页 |
| 3.5 17-DMAG诱导白血病HL-60 细胞TET2基因表达增强 | 第67页 |
| 3.6 TET2过表达增强白血病HL-60 细胞对 17-DMAG的治疗敏感性 | 第67-68页 |
| 3.7 17-DMAG通过抑制PI-3K/Akt信号通路促进HL-60 白血病细胞凋亡 | 第68-69页 |
| 4、讨论 | 第69-71页 |
| 5、结论 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-79页 |
| 附录 | 第79-83页 |
| 本人简历 | 第79-82页 |
| 英文缩略词表 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 综述 | 第84-111页 |
| 参考文献 | 第100-111页 |
