| 致谢 | 第9-10页 |
| 缩略表 | 第10-11页 |
| 摘要 | 第11-12页 |
| Abstract | 第12页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-24页 |
| 引言 | 第13页 |
| 1 LIR1的研究进展 | 第13-16页 |
| 1.1 水稻OsLIR1表型分析 | 第14页 |
| 1.2 光照促进LIR1蛋白的降解 | 第14-15页 |
| 1.3 LIR1互作蛋白的研究 | 第15页 |
| 1.4 LIR1调控LFNR的昼夜节律分布 | 第15-16页 |
| 1.5 水稻LIR1参与光合作用 | 第16页 |
| 2 LFNR的研究进展 | 第16-20页 |
| 2.1 铁氧还蛋白-NADP~+氧化还原酶的类型 | 第17-18页 |
| 2.2 LFNR功能的研究进展 | 第18-20页 |
| 2.2.1 LFNR在CET中的功能 | 第18-19页 |
| 2.2.2 LFNR在抵抗氧化胁迫中的功能 | 第19-20页 |
| 3 LFNR的互作蛋白Tic62 | 第20-21页 |
| 4 LFNR的互作蛋白TROL | 第21-23页 |
| 5 研究的目的和意义 | 第23-24页 |
| 第二章 LIR1增强LFNR和Tic62的结合 | 第24-40页 |
| 1 体外类囊体膜洗脱实验 | 第24-29页 |
| 1.1 材料 | 第24页 |
| 1.2 方法 | 第24-29页 |
| 1.2.1 GST-LIR1原核蛋白的诱导和纯化 | 第24-26页 |
| 1.2.2 体外类囊体膜洗脱实验 | 第26-27页 |
| 1.2.3 Western Blot | 第27-29页 |
| 2 结果与讨论 | 第29-31页 |
| 2.1 结果 | 第29-30页 |
| 2.2 讨论 | 第30-31页 |
| 3 体外蛋白互作实验 | 第31-36页 |
| 3.1 材料 | 第31页 |
| 3.2 方法 | 第31-32页 |
| 3.2.1 His-OsTic62Ct原核表达载体的构建 | 第31-32页 |
| 3.3 TPS提植物基因组DNA | 第32-33页 |
| 3.4 PCR产物回收 | 第33页 |
| 3.5 Trizol法提取植物总RNA | 第33-34页 |
| 3.6 RNA反转录成cDNA操作方法 | 第34-35页 |
| 3.7 植物总蛋白提取 | 第35-36页 |
| 4 水稻Ostic62突变体鉴定结果分析 | 第36-37页 |
| 5 His Pull Down实验 | 第37-38页 |
| 5.1 植物蛋白提取液制备 | 第37页 |
| 5.2 His-Tic62Ct结合Ni~(2+)beads | 第37页 |
| 5.3 His-Tic62Ct pull down 分析 | 第37-38页 |
| 6 结果与分析 | 第38-40页 |
| 6.1 结果 | 第38-39页 |
| 6.2 分析 | 第39-40页 |
| 第三章 LIR1与Tic62是否直接互作的研究 | 第40-51页 |
| 1 GST pull down实验 | 第40-44页 |
| 1.1 材料和方法 | 第40-43页 |
| 1.1.1 材料 | 第40页 |
| 1.1.2 方法 | 第40-43页 |
| 1.1.2.1 GST-OsTic62原核表达载体的构建 | 第40-41页 |
| 1.1.2.2 OsLIR1-His原核表达载体的构建 | 第41-42页 |
| 1.1.2.3 His-OsLFNR1/2原核表达载体图谱的构建 | 第42-43页 |
| 1.2 GST pull down实验内容 | 第43-44页 |
| 2 酵母双杂实验 | 第44-48页 |
| 2.1 载体构建 | 第44-45页 |
| 2.2 酵母感受态细胞的制备 | 第45页 |
| 2.3 酵母感受态细胞的转化 | 第45-48页 |
| 3 结果 | 第48页 |
| 4 小结和讨论 | 第48-49页 |
| 附录 | 第49-51页 |
| 第四章 结论与展望 | 第51-53页 |
| 1 结论 | 第51页 |
| 2 展望 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
