| 摘要 | 第3-7页 |
| ABSTRACT | 第7-11页 |
| 前言 | 第14-20页 |
| 材料和方法 | 第20-33页 |
| 1 实验材料 | 第20-25页 |
| 1.1 细胞培养 | 第20页 |
| 1.2 主要试剂 | 第20-21页 |
| 1.3 实验仪器 | 第21-22页 |
| 1.4 主要溶液的配制 | 第22-25页 |
| 2 实验方法 | 第25-32页 |
| 2.1 HL-60细胞的培养及诱导分化 | 第25页 |
| 2.2 人中性粒细胞分离 | 第25-26页 |
| 2.3 细胞极性实验 | 第26-27页 |
| 2.4 dHL-60细胞内F-actin的免疫荧光测定 | 第27页 |
| 2.5 流式细胞仪测定dHL-60细胞的凋亡率 | 第27-28页 |
| 2.6 GST pull down操作步骤 | 第28页 |
| 2.7 蛋白免疫印迹实验 | 第28-32页 |
| 3 结果分析 | 第32-33页 |
| 结果 | 第33-44页 |
| 1. DMSO诱导HL-60细胞分化为dHL-60细胞 | 第33页 |
| 2. TCN抑制fMLP诱导的dHL-60细胞的极性化 | 第33-36页 |
| 3. TCN对人中性粒细胞的极性化影响 | 第36-37页 |
| 4. TCN对dHL-60细胞内聚合F-actin的影响 | 第37-38页 |
| 5. TCN通过对细胞内活化Rac2和Cdc42蛋白的影响而抑制dHL-60细胞极性化 | 第38-39页 |
| 6. 60-80μM TCN增加dHL-60细胞的凋亡 | 第39-41页 |
| 7. TCN的不同量效关系与其抑制Akt磷酸化程度不同有关 | 第41-42页 |
| 8. TCN抑制Akt向膜上的募集 | 第42-44页 |
| 讨论 | 第44-48页 |
| 1. TCN在调节dHL-60细胞极性中的作用 | 第44-45页 |
| 2. TCN在dHL-60细胞凋亡过程中的作用 | 第45-46页 |
| 3. TCN在抗肿瘤研究中的作用 | 第46-48页 |
| 全文小结 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 硕士期间发表论文 | 第55-56页 |
| 英文缩略词表 | 第56-58页 |
