| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第14-58页 |
| 1.1 阿尔兹海默症概述 | 第14-15页 |
| 1.2 淀粉样多肽的研究现状 | 第15-18页 |
| 1.2.1 APP与Aβ的产生 | 第15-17页 |
| 1.2.2 Aβ多肽的自组装及其毒性 | 第17-18页 |
| 1.3 Aβ的检测方法 | 第18-27页 |
| 1.3.1 比色检测 | 第18-19页 |
| 1.3.2 电化学检测 | 第19-21页 |
| 1.3.3 荧光传感器 | 第21-23页 |
| 1.3.4 基于ELISA的传感器 | 第23页 |
| 1.3.5 表面等离子体共振传感器 | 第23-25页 |
| 1.3.6 动态光散射技术 | 第25-26页 |
| 1.3.7 其他检测方法 | 第26-27页 |
| 1.4 双偏振极化干涉测量技术 | 第27-42页 |
| 1.4.1 DPI工作原理及特点 | 第27-29页 |
| 1.4.2 DPI与其他分析方法的对比 | 第29页 |
| 1.4.3 DPI的应用 | 第29-42页 |
| 1.4.3.1 蛋白质研究 | 第29-37页 |
| 1.4.3.1.1 蛋白质构象变化 | 第30-31页 |
| 1.4.3.1.2 蛋白质结晶过程 | 第31-32页 |
| 1.4.3.1.3 表面吸附行为 | 第32-34页 |
| 1.4.3.1.4 相互作用 | 第34-37页 |
| 1.4.3.2 DNA与小分子相互作用 | 第37-40页 |
| 1.4.3.3 脂质体和膜的研究 | 第40-42页 |
| 1.5 选题背景与意义 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-58页 |
| 第二章 基于Cu~(2+)与Aβ相互作用构建比色传感器检测Aβ_((1-40/1-42)) | 第58-73页 |
| 2.1 引言 | 第58-59页 |
| 2.2 实验部分 | 第59-61页 |
| 2.2.1 试剂和仪器设备 | 第59-60页 |
| 2.2.2 银纳米粒子和Ab-AgNPs的制备 | 第60页 |
| 2.2.3 Aβ的制备 | 第60页 |
| 2.2.4 免疫印迹和银染实验 | 第60页 |
| 2.2.5 AFM表征不同形态的Aβ | 第60-61页 |
| 2.2.6 Aβ_((1-40/1-42))的定量检测 | 第61页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第61-68页 |
| 2.3.1 制备Ab-AgNPs及其表征 | 第61-63页 |
| 2.3.2 紫外可见吸收光谱表征 | 第63页 |
| 2.3.3 实验条件优化 | 第63-65页 |
| 2.3.4 定量检测Aβ_((1-40/1-42)) | 第65-66页 |
| 2.3.5 选择性试验 | 第66-67页 |
| 2.3.6 实际样品检测 | 第67-68页 |
| 2.4 结论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-73页 |
| 第三章 基于双抗体和金纳米粒子构建比色免疫传感器检测Aβ_((1-42)) | 第73-88页 |
| 3.1 引言 | 第73-74页 |
| 3.2 实验部分 | 第74-76页 |
| 3.2.1 化学药品和材料 | 第74页 |
| 3.2.2 实验装置 | 第74页 |
| 3.2.3 AuNPs和AuNPs@C/N-Ab_((1-42))的制备 | 第74-75页 |
| 3.2.4 Aβ_((1-42))的制备 | 第75页 |
| 3.2.5 AFM和免疫印迹技术表征Aβ | 第75页 |
| 3.2.6 Aβ_((1-42))的定量检测 | 第75-76页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第76-83页 |
| 3.3.1 AuNPs@C/N-Ab_((1-42))的制备和表征 | 第76-77页 |
| 3.3.2 检测原理 | 第77-78页 |
| 3.3.3 可行性实验 | 第78-79页 |
| 3.3.4 优化实验条件 | 第79-81页 |
| 3.3.5 定量检测Aβ_((1-42)) | 第81页 |
| 3.3.6 选择性实验 | 第81-82页 |
| 3.3.7 实际样品检测 | 第82-83页 |
| 3.4 结论 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-88页 |
| 第四章 双偏振极化干涉技术实时研究不同形态的淀粉样多化与Lilrb2受体相互作用 | 第88-108页 |
| 4.1 引言 | 第88-89页 |
| 4.2 实验部分 | 第89-92页 |
| 4.2.1 化学药品和材料 | 第89-90页 |
| 4.2.2 Aβ_((1-42))样品制备 | 第90页 |
| 4.2.3 原子力显微镜表征 | 第90页 |
| 4.2.4 免疫共沉淀表征 | 第90页 |
| 4.2.5 蛋白质印迹 | 第90-91页 |
| 4.2.6 DPI实验 | 第91页 |
| 4.2.7 动力学参数的线性分析 | 第91-92页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第92-103页 |
| 4.3.1 表征Aβ_((1-42))及探究LMW Aβ_((1-42))-ED1D2L相互作用 | 第92-94页 |
| 4.3.2 DPI监测ED1D2L在芯片表面的固定过程 | 第94-96页 |
| 4.3.3 DPI研究三种形态Aβ_((1-42))和ED1D2L相互作用 | 第96-98页 |
| 4.3.4 探究不同形态Aβ_((1-42))-ED1D2L动力学信息 | 第98-102页 |
| 4.3.5 不同形态Aβ_((1-42))与ED1D2L受体结合模型 | 第102-103页 |
| 4.4 结论 | 第103-104页 |
| 参考文献 | 第104-108页 |
| 第五章 论文总结 | 第108-110页 |
| 致谢 | 第110-112页 |
| 在读期间发表的学术论文与取得的其他研究成果 | 第112-113页 |
