摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
第一章 绪论 | 第12-33页 |
1.1 自组装概述 | 第12页 |
1.2 超分子水凝胶概述 | 第12-13页 |
1.3 超分子水凝胶的应用 | 第13-16页 |
1.4 生物分子诱导的超分子水凝胶 | 第16-18页 |
1.5 超分子水凝胶的表征 | 第18-20页 |
1.6 生物成像分析 | 第20-24页 |
1.7 本课题的提出 | 第24-26页 |
参考文献 | 第26-33页 |
第二章 酶促超分子水凝胶组装与解组装的微观过程观察 | 第33-51页 |
2.1 引言 | 第33-34页 |
2.2 实验方法 | 第34-38页 |
2.2.1 试验方法及仪器型号 | 第34页 |
2.2.2 化合物的合成与表征 | 第34-38页 |
2.3 结果与讨论 | 第38-46页 |
2.3.1 成像条件优化 | 第38-41页 |
2.3.2 高分辨纳米纤维图像的获得及分子堆积模型的提出 | 第41-42页 |
2.3.3 碱性磷酸酶诱导的纳米纤维组装过程的动态图像 | 第42-43页 |
2.3.4 超分子纳米纤维自愈过程的动态图像 | 第43-44页 |
2.3.5 表皮生长因子受体激酶诱导的纳米纤维解组装过程的动态图像 | 第44-46页 |
2.4 本章小结 | 第46-48页 |
参考文献 | 第48-51页 |
第三章 氟化超分子水凝胶用于磷酸酶/酪氨酸激酶的~(19)FNMR成像分析 | 第51-69页 |
3.1 引言 | 第51-54页 |
3.2 实验方法 | 第54-58页 |
3.2.1 试验方法及仪器型号 | 第54页 |
3.2.2 化合物的合成与表征 | 第54-58页 |
3.3 结果与讨论 | 第58-65页 |
3.3.1 氟化超分子水凝胶成胶条件的摸索 | 第58-59页 |
3.3.2 氟化超分子水凝胶流变性能测试 | 第59-60页 |
3.3.3 氟化超分子水凝胶形貌学研究以及内部分子堆积模型的提出 | 第60-61页 |
3.3.4 利用~(19)F NMR/MRI信号的"亮/暗"实现EGFR和ALP的体外检测 | 第61-63页 |
3.3.5 利用~(19)F NMR信号的"亮/暗"检测细胞内EGFR及ALP的活性 | 第63-65页 |
3.4 本章小结 | 第65-67页 |
参考文献 | 第67-69页 |
第四章 碘化超分子水凝胶用于磷酸酶的软X射线成像分析 | 第69-85页 |
4.1 引言 | 第69-70页 |
4.2 合成步骤 | 第70-74页 |
4.2.1 实验基本方法及仪器型号 | 第70-71页 |
4.2.2 化合物的合成 | 第71-74页 |
4.3 结果与讨论 | 第74-82页 |
4.3.1 碘化超分子水凝胶成胶条件优化 | 第74-76页 |
4.3.2 碘化超分子水凝胶流变性能测试化合物缩合后的荧光改变 | 第76-77页 |
4.3.3 碘化超分子水凝胶形貌学研究以及内部分子堆积模型的提出 | 第77-78页 |
4.3.4 高表达ALP的大肠杆菌模型的建立及含碘凝胶前体小分子的细胞摄取与转化 | 第78-80页 |
4.3.5 大肠杆菌细胞中碱性磷酸酶的软X射线断层微CT成像 | 第80-82页 |
4.4 小结与展望 | 第82-83页 |
参考文献 | 第83-85页 |
第五章 功能化超分子水凝胶用于细胞内外环境区分 | 第85-106页 |
5.1 引言 | 第85-86页 |
5.2 实验方法 | 第86-90页 |
5.2.1 试剂及仪器型号 | 第86-87页 |
5.2.2 化合物的合成 | 第87-90页 |
5.3 结果与讨论 | 第90-102页 |
5.3.1 CBT-Cys反应机理的研究 | 第90-94页 |
5.3.2 Gel 2和Gel 2D的成胶条件 | 第94-95页 |
5.3.3 Gel 2和Gel 2D的性能表征(流变性能测试、形貌学研究及临界胶束浓度测定) | 第95-97页 |
5.3.4 Gel 2和Gel 2D的化学组分分析 | 第97-98页 |
5.3.5 内部分子堆积研究及堆积模型的提出 | 第98-100页 |
5.3.6 细胞实验验证 | 第100-102页 |
5.4 小结与展望 | 第102-103页 |
参考文献 | 第103-106页 |
第六章 总结与展望 | 第106-107页 |
附录 彩色图片 | 第107-109页 |
致谢 | 第109-110页 |
在读期间发表的学术论文与取得的研究成果 | 第110-111页 |