| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩略表 | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-20页 |
| 1.1 转基因大豆育种的必要性 | 第10页 |
| 1.2 大豆遗传转化技术 | 第10-17页 |
| 1.2.1 大豆遗传转化的受体系统 | 第10-12页 |
| 1.2.2 大豆遗传转化方法 | 第12-15页 |
| 1.2.3 遗传转化的再生体系 | 第15-17页 |
| 1.3 大豆遗传转化的改良及存在的问题 | 第17-18页 |
| 1.4 利用发根农杆菌转化大豆的可行性 | 第18-19页 |
| 1.5 本研究的目的、意义 | 第19-20页 |
| 第二章 根癌农杆菌介导的子叶节转化体系的优化 | 第20-33页 |
| 2.1 试验材料 | 第20-21页 |
| 2.2 试验方法 | 第21-25页 |
| 2.2.1 大豆种子发芽1天和发芽5天对转化的影响 | 第23-24页 |
| 2.2.2 侵染培养基添加Silwet L-77对大豆转化的影响 | 第24页 |
| 2.2.3 子叶节划伤次数对大豆转化的影响 | 第24页 |
| 2.2.4 筛选培养基添加AgNO_3对大豆转化的影响 | 第24-25页 |
| 2.2.5 培养皿盖下面凝结水对大豆转化的影响 | 第25页 |
| 2.2.6 不同大豆品种对6-BA的反应 | 第25页 |
| 2.3 结果与分析 | 第25-29页 |
| 2.3.1 发芽1d的大豆种子作为外植体进行划伤、侵染,有利于减少污染和提高转化效 | 第25-26页 |
| 2.3.2 侵染培养基添加Silwet不能提高大豆子叶节转化效率 | 第26页 |
| 2.3.3 子叶节划伤次数过多会影响芽的再生 | 第26-27页 |
| 2.3.4 筛选培养基和伸长培养基添加AgNO_3对大豆转化的影响 | 第27页 |
| 2.3.5 培养皿盖下面凝结水对大豆转化的影响 | 第27-28页 |
| 2.3.6 不同大豆品种对6-BA的反应不同 | 第28-29页 |
| 2.4 讨论 | 第29-33页 |
| 第三章 过表达AtWUSCHEL基因对大豆离体根再生植株的探索 | 第33-54页 |
| 3.1 试验材料 | 第33-34页 |
| 3.1.1 大豆和拟南芥品种 | 第33页 |
| 3.1.2 载体及菌株 | 第33-34页 |
| 3.2 试验方法 | 第34-50页 |
| 3.2.1 AtWUS基因的克隆 | 第34-40页 |
| 3.2.2 AtWUS基因表达载体的构建 | 第40-44页 |
| 3.2.3 根癌农杆菌转化大豆 | 第44页 |
| 3.2.4 转化植株的检测 | 第44-46页 |
| 3.2.5 过表达AtWUS基因的大豆根再生植株的探索 | 第46-48页 |
| 3.2.6 AtWUS基因的表达对CLVATA基因表达的影响 | 第48-49页 |
| 3.2.7 AtWUS基因大豆植株表型变化 | 第49-50页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第50-54页 |
| 3.3.1 后代检测的准确性 | 第50-51页 |
| 3.3.2 过表达AtWUS基因的大豆植株外源基因在T_1的检出率低 | 第51页 |
| 3.3.3 T1代阳性植株离体根再生 | 第51-52页 |
| 3.3.4 大豆植株中AtWUS基因的表达对CLVATA基因表达的影响 | 第52页 |
| 3.3.5 过表达AtWUS基因大豆植株的形态变化 | 第52-54页 |
| 第四章 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 博士后期间发表的论文 | 第67-68页 |
| 个人简历 | 第68-69页 |
| 永久通信地址 | 第69页 |
