| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-10页 |
| 引言 | 第10-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-20页 |
| ·低温与植物的光合作用 | 第11-12页 |
| ·光照与植物的光合作用 | 第12-13页 |
| ·植物在低温条件下的光抑制 | 第13-15页 |
| ·低温与PSII的光抑制 | 第13-14页 |
| ·低温与PSI的光抑制 | 第14-15页 |
| ·低温胁迫对植物叶绿素荧光特性的影响 | 第15-16页 |
| ·低温胁迫下与D1蛋白周转相关的调控因子 | 第16-17页 |
| ·PsbA基因 | 第16-17页 |
| ·FtsH基因 | 第17页 |
| ·其他调控因子 | 第17页 |
| ·杨梅低温光抑制研究现状 | 第17-18页 |
| ·本研究立题依据和研究意义 | 第18-20页 |
| 2 低温对杨梅叶片气体交换的影响 | 第20-29页 |
| ·材料与方法 | 第20页 |
| ·供试材料 | 第20页 |
| ·试验处理 | 第20页 |
| ·研究方法 | 第20-21页 |
| ·数据分析 | 第21页 |
| ·结果与分析 | 第21-27页 |
| ·三种不同光温处理对杨梅AQY影响 | 第21-23页 |
| ·三种不同光温处理对杨梅Pn影响 | 第23-25页 |
| ·三种不同光温处理对杨梅CE影响 | 第25-27页 |
| ·讨论 | 第27-29页 |
| 3 杨梅叶片叶绿素荧光参数的日变化 | 第29-34页 |
| ·材料与方法 | 第29页 |
| ·供试材料 | 第29页 |
| ·主要仪器 | 第29页 |
| ·研究方法 | 第29-30页 |
| ·数据分析 | 第30页 |
| ·结果与分析 | 第30-32页 |
| ·PSII的量子产额（ΦPSII）的日变化 | 第30-31页 |
| ·非循环电子传递速率（ETR）的日变化 | 第31-32页 |
| ·讨论 | 第32-34页 |
| 4 杨梅叶片叶绿素荧光成像参数日变化 | 第34-39页 |
| ·材料与方法 | 第34页 |
| ·供试材料 | 第34页 |
| ·主要仪器 | 第34页 |
| ·研究方法 | 第34页 |
| ·数据分析 | 第34-37页 |
| ·PSII的量子产额（ΦPSII）的日变化 | 第35页 |
| ·相对光合电子传递速率（ETR）的日变化 | 第35-36页 |
| ·光化学猝灭系数（qP）的日变化 | 第36-37页 |
| ·非光化学猝灭（qN）的日变化 | 第37页 |
| ·讨论 | 第37-39页 |
| 5 杨梅PsbA、FtsH基因在低温光胁迫条件下的表达模式 | 第39-49页 |
| ·试验材料 | 第39-40页 |
| ·材料及处理 | 第39页 |
| ·主要试验试剂 | 第39-40页 |
| ·主要试验仪器 | 第40页 |
| ·试验设计与方法 | 第40-43页 |
| ·叶片总RNA的提取 | 第40-41页 |
| ·RNA质量检测 | 第41页 |
| ·检测总RNA的完整性 | 第41页 |
| ·检测总RNA的吸光度 | 第41页 |
| ·RNA反转录 | 第41-42页 |
| ·qRT-PCR | 第42-43页 |
| ·数据分析 | 第43页 |
| ·结果与分析 | 第43-48页 |
| ·不同低温光处理下PsbA基因的表达水平 | 第43-45页 |
| ·不同低温光处理下FtsH基因的表达水平 | 第45-48页 |
| ·讨论 | 第48-49页 |
| 6 结语 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-57页 |
| 附录 | 第57-59页 |
| 个人简介 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60页 |