| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-9页 |
| 1 文献综述 | 第9-18页 |
| ·高等植物成花诱导研究进展 | 第9-15页 |
| ·光周期途径 | 第9-11页 |
| ·自主途径 | 第11-13页 |
| ·春化途径 | 第13页 |
| ·赤霉素途径 | 第13-14页 |
| ·开花途径整合因子 | 第14-15页 |
| ·蝴蝶兰成花诱导进展 | 第15-18页 |
| ·蝴蝶兰的生物学特性及市场前景 | 第15-16页 |
| ·蝴蝶兰成花的研究进展 | 第16-18页 |
| ·生理生化方面的研究 | 第16-17页 |
| ·分子生物学方面的研究 | 第17-18页 |
| 2 自主途径和光周期途径成花相关基因的克隆与分析 | 第18-30页 |
| ·基因序列下载 | 第18-19页 |
| ·试验试剂 | 第19页 |
| ·主要仪器设备 | 第19页 |
| ·试验方法 | 第19-27页 |
| ·试验材料 | 第19-20页 |
| ·处理方法 | 第20-21页 |
| ·光周期诱导组材料处理 | 第20页 |
| ·自主途径诱导组材料处理 | 第20-21页 |
| ·反转录生成cDNA | 第21页 |
| ·设计特异性的引物 | 第21-24页 |
| ·PCR扩增基因片段 | 第24页 |
| ·PCR产物的胶回收 | 第24-25页 |
| ·目的片段与载体连接 | 第25页 |
| ·大肠杆菌（DH5α）感受态的制备 | 第25-26页 |
| ·配制LB培养基 | 第25页 |
| ·配制 0.1M CaCl_2溶液和CaCl_2-甘油（15%）溶液 | 第25页 |
| ·制备感受态细胞 | 第25-26页 |
| ·连接产物转化 | 第26页 |
| ·菌检与测序 | 第26-27页 |
| ·结果与分析 | 第27-30页 |
| ·总RNA的提取结果 | 第27-28页 |
| ·测序结果分析 | 第28-30页 |
| 3 蝴蝶兰成花调控体系的建立 | 第30-33页 |
| ·试验材料 | 第30页 |
| ·试验方法 | 第30页 |
| ·光周期诱导组材料处理 | 第30页 |
| ·自主途径诱导组材料处理 | 第30页 |
| ·结果与分析 | 第30-33页 |
| ·光周期诱导组 | 第30-32页 |
| ·自主途径实验组 | 第32-33页 |
| 4 不同处理下成花相关基因的时空表达 | 第33-56页 |
| ·试验材料 | 第33页 |
| ·植物材料 | 第33页 |
| ·主要试剂 | 第33页 |
| ·主要仪器设备 | 第33页 |
| ·试验方法 | 第33-36页 |
| ·植物材料的处理 | 第33页 |
| ·样品的采集与保存 | 第33-34页 |
| ·提取总RNA | 第34页 |
| ·cDNA的生成 | 第34页 |
| ·引物设计 | 第34页 |
| ·模板与引物的验证 | 第34-35页 |
| ·荧光定量PCR | 第35-36页 |
| ·结果与分析 | 第36-51页 |
| ·模板与引物的验证 | 第36页 |
| ·蝴蝶兰相关基因定量表达分析 | 第36-51页 |
| ·光周期实验组相关基因表达量分析 | 第36-49页 |
| ·自主途径相关基因表达量分析 | 第49-51页 |
| ·讨论 | 第51-56页 |
| ·蝴蝶兰光周期诱导成花相关基因 | 第51-52页 |
| ·蝴蝶兰自主成花相关基因 | 第52页 |
| ·基因互作关系 | 第52-56页 |
| 5 光周期条件下蝴蝶兰理化特性 | 第56-64页 |
| ·试验材料 | 第56页 |
| ·试验设计 | 第56页 |
| ·内源激素测定 | 第56页 |
| ·碳水化合物测定方法 | 第56-58页 |
| ·可溶性总糖含量的测定 | 第56-57页 |
| ·淀粉含量的测定 | 第57页 |
| ·蔗糖、果糖、葡萄糖的测定 | 第57-58页 |
| ·数据分析方法 | 第58页 |
| ·结果与分析 | 第58-63页 |
| ·不同光照长度下蝴蝶兰嫩叶激素含量 | 第58-60页 |
| ·不同光照长度下蝴蝶兰第二叶碳水化合物的含量 | 第60-63页 |
| ·讨论 | 第63-64页 |
| 6 结论与讨论 | 第64-66页 |
| ·结论 | 第64页 |
| ·讨论 | 第64-65页 |
| ·展望 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-71页 |
| 附录 | 第71-72页 |
| 个人简介 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73页 |