| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-12页 |
| 第一章 综述 | 第12-17页 |
| ·邻苯二甲酸酯的物理化学性质 | 第12页 |
| ·邻苯二甲酸酯的用途及危害 | 第12-13页 |
| ·环境中邻苯二甲酸酯的分布与含量 | 第13-14页 |
| ·邻苯二甲酸酯的降解途径 | 第14-16页 |
| ·水解 | 第14页 |
| ·光解 | 第14-15页 |
| ·生物降解 | 第15-16页 |
| ·本文研究意义及内容 | 第16-17页 |
| 第二章 DBP降解菌的分离与鉴定 | 第17-35页 |
| ·引言 | 第17-18页 |
| ·材料 | 第18-21页 |
| ·菌种 | 第18页 |
| ·培养基与试剂 | 第18-20页 |
| ·培养基 | 第18-19页 |
| ·试剂 | 第19-20页 |
| ·药品与试剂 | 第20-21页 |
| ·仪器 | 第21页 |
| ·方法 | 第21-27页 |
| ·降解菌筛选分离 | 第22页 |
| ·初筛 | 第22页 |
| ·复筛 | 第22页 |
| ·DBP浓度分析方法 | 第22页 |
| ·菌种鉴定 | 第22-27页 |
| ·革兰氏染色 | 第22-23页 |
| ·透射电镜观察 | 第23页 |
| ·生理生化特征 | 第23-25页 |
| ·分子生物学鉴定 | 第25-27页 |
| ·结果与讨论 | 第27-34页 |
| ·菌株的筛选及分离纯化 | 第27-29页 |
| ·菌株筛选结果 | 第27-29页 |
| ·HPLC检测DBP降解结果 | 第29页 |
| ·菌株的鉴定 | 第29-34页 |
| ·革兰氏染色 | 第29-30页 |
| ·透射电镜及普通显微镜观察 | 第30-31页 |
| ·生理生化特征 | 第31-32页 |
| ·分子生物学鉴定 | 第32-34页 |
| ·小结 | 第34-35页 |
| 第三章 Arthrobacter sp.ZJUTW生长细胞对DBP的降解特性研究 | 第35-50页 |
| ·引言 | 第35-36页 |
| ·材料 | 第36-37页 |
| ·药品及试剂 | 第36-37页 |
| ·仪器 | 第37页 |
| ·方法 | 第37-39页 |
| ·DBP生物降解检测方法的建立 | 第37-38页 |
| ·萃取剂的选择以及最佳检测波长的确定 | 第37页 |
| ·石油醚萃取DBP稳定性实验 | 第37页 |
| ·石油醚萃取DBP标准曲线的制作 | 第37页 |
| ·石油醚萃取DBP精密度和重复性实验 | 第37页 |
| ·石油醚萃取回收率实验 | 第37-38页 |
| ·甲醇对萃取的影响实验 | 第38页 |
| ·培养条件对DBP降解的影响 | 第38页 |
| ·HPLC法制定DBP浓度标准曲线 | 第38页 |
| ·底物浓度对菌株ZJUTW降解作用的影响 | 第38页 |
| ·初始pH值对菌株ZJUTW降解作用的影响 | 第38页 |
| ·培养温度对菌株ZJUTW降解作用的影响 | 第38页 |
| ·菌株ZJUTW对不同PAEs的降解能力 | 第38页 |
| ·DBP降解中间产物分析 | 第38-39页 |
| ·分析方法 | 第39页 |
| ·石油醚萃取DBP | 第39页 |
| ·HPLC测定DBP含量 | 第39页 |
| ·GC-MS测定DBP降解中间产物的方法 | 第39页 |
| ·结果与讨论 | 第39-49页 |
| ·降解检测方法建立 | 第39-42页 |
| ·萃取剂的选择及最佳检测波长的确定 | 第39-40页 |
| ·石油醚萃取的稳定性 | 第40-41页 |
| ·石油醚萃取DBP标准曲线绘制 | 第41页 |
| ·精密度实验 | 第41-42页 |
| ·回收率实验 | 第42页 |
| ·甲醇对萃取的影响 | 第42页 |
| ·培养条件对DBP降解的影响 | 第42-45页 |
| ·HPLC法DBP标准曲线绘制 | 第42-43页 |
| ·底物浓度对菌株ZJUTW降解能力的影响 | 第43-44页 |
| ·不同初始pH对菌株ZJUTW降解能力的影响 | 第44页 |
| ·温度培养对菌株ZJUTW降解能力的影响 | 第44-45页 |
| ·菌株ZJUTW对不同PAEs的降解能力 | 第45-46页 |
| ·底物广谱性实验 | 第46-47页 |
| ·对不同初始浓度的DBP降解曲线的线性拟合 | 第47页 |
| ·DBP降解中间产物分析 | 第47-49页 |
| ·小结 | 第49-50页 |
| 第四章 Arthrobacter sp.ZJUTW休止细胞对DBP及DEP的降解特性研究 | 第50-59页 |
| ·引言 | 第50页 |
| ·材料 | 第50-51页 |
| ·试剂与仪器 | 第50页 |
| ·培养基 | 第50-51页 |
| ·方法 | 第51-52页 |
| ·降解菌的休止细胞的制备 | 第51页 |
| ·不同条件下休止细胞对DEP及DBP降解的影响 | 第51页 |
| ·DEP检测方法 | 第51页 |
| ·DBP检测方法 | 第51-52页 |
| ·结果与讨论 | 第52-57页 |
| ·不同因素对休止细胞降解DEP的影响 | 第52-55页 |
| ·温度对休止细胞降解DEP的影响 | 第52页 |
| ·pH对休止细胞降解DEP的影响 | 第52-53页 |
| ·休止细胞浓度对DEP降解的影响 | 第53-54页 |
| ·Tween-80对休止细胞降解DEP的影响 | 第54页 |
| ·底物浓度对休止细胞降解DEP的影响 | 第54-55页 |
| ·不同因素对休止细胞降解DBP的影响 | 第55-57页 |
| ·温度对休止细胞降解DBP的影响 | 第55-56页 |
| ·pH对休止细胞降解DBP的影响 | 第56-57页 |
| ·底物浓度对休止细胞降解DBP的影响 | 第57页 |
| ·小结 | 第57-59页 |
| 第五章 Arthrobacter sp.ZJUTW邻苯二甲酸酯降解酶研究 | 第59-70页 |
| ·引言 | 第59页 |
| ·材料 | 第59-61页 |
| ·仪器 | 第59-60页 |
| ·药品及试剂 | 第60页 |
| ·溶液及试剂 | 第60-61页 |
| ·方法 | 第61-64页 |
| ·细菌培养 | 第61页 |
| ·胞内酶的制备 | 第61页 |
| ·胞外酶的制备 | 第61页 |
| ·提取物蛋白含量测定 | 第61-62页 |
| ·DBP降解酶的定位 | 第62页 |
| ·超声破碎时间对蛋白含量的影响 | 第62-63页 |
| ·邻苯二甲二丁酯酶促降解的研究 | 第63页 |
| ·粗酶性质的研究 | 第63-64页 |
| ·pH对酶促降解反应的影响 | 第63页 |
| ·粗酶液的pH稳定性 | 第63页 |
| ·温度对酶促降解反应的影响 | 第63页 |
| ·粗酶液的温度稳定性 | 第63-64页 |
| ·金属离子对粗酶活力的影响 | 第64页 |
| ·降解酶米氏常数的测定 | 第64页 |
| ·结果与讨论 | 第64-69页 |
| ·降解酶的定位 | 第64页 |
| ·超声破碎条件的确定 | 第64-65页 |
| ·粗酶性质的研究 | 第65-69页 |
| ·pH对降解酶活性的影响 | 第65-66页 |
| ·降解酶的pH稳定性 | 第66-67页 |
| ·温度对降解酶活性的影响 | 第67页 |
| ·降解酶的温度稳定性 | 第67-68页 |
| ·金属离子对降解酶活性的影响 | 第68-69页 |
| ·降解酶米氏常数的测定 | 第69页 |
| ·小结 | 第69-70页 |
| 第六章 实验总结与展望 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 攻读硕士学位期间论文发表情况 | 第78页 |
