摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-15页 |
符号与缩略语 | 第15-16页 |
第一章 文献综述 | 第16-39页 |
·活性污泥中主要的生物种类 | 第16-23页 |
·微生物 | 第16-22页 |
·去除COD的微生物 | 第16-18页 |
·芽孢杆菌属(Bacillus) | 第17页 |
·黄杆菌属(Flavoacterium) | 第17页 |
·产碱杆菌属(Alcaligenes) | 第17-18页 |
·除磷微生物 | 第18-19页 |
·不动杆菌属(Acinetobacter) | 第18页 |
·假单胞菌属(Pseudomonas) | 第18-19页 |
·红环菌属(Rhodocyclus) | 第19页 |
·气单胞菌属(Aeromonas) | 第19页 |
·脱氮微生物 | 第19-22页 |
·硝化细菌 | 第19-21页 |
·反硝化细菌(Denitrifying bacteria) | 第21-22页 |
·原生动物 | 第22-23页 |
·后生动物 | 第23页 |
·活性污泥中微生物的可培养性 | 第23-27页 |
·未培养微生物的概念及多样性 | 第23页 |
·未培养微生物生存模式 | 第23-25页 |
·共同协作的自然生存方式的崩溃 | 第23-24页 |
·急剧改变的生态位 | 第24页 |
·生境的极度营养变化 | 第24页 |
·潜在外源活性物质的缺乏 | 第24-25页 |
·微生物可培养方法研究进展 | 第25-27页 |
·稀释培养法 | 第25页 |
·加富培养法 | 第25页 |
·混合培养法 | 第25-26页 |
·模拟自然培养法 | 第26-27页 |
·细胞微胶囊法 | 第26页 |
·扩散小室法 | 第26页 |
·近自然纯培养法 | 第26-27页 |
·活性污泥中功能微生物的研究方法 | 第27-31页 |
·传统法在活性污泥功能微生物研究中的应用 | 第27页 |
·分子生态学技术在活性污泥功能微生物研究中的应用 | 第27-31页 |
·变性梯度凝胶电泳技术(DGGE) | 第27-28页 |
·限制性片段多态性(RFLP)/末端限制性片段多态性(T-RFLP)分析 | 第28-29页 |
·核糖体DNA扩增片段的限制性内切酶分析(ARDRA) | 第29-30页 |
·DNA单链构象多态性(SSCP)分析 | 第30页 |
·ERIC-PCR图谱分析 | 第30-31页 |
·荧光原位杂交(FISH) | 第31页 |
·本课题研究意义、主要内容及技术路线 | 第31-33页 |
·研究意义 | 第31-32页 |
·主要研究内容 | 第32页 |
·技术路线 | 第32-33页 |
参考文献 | 第33-39页 |
第二章 生活污水活性污泥的培养与驯化 | 第39-58页 |
·前言 | 第39页 |
·材料与方法 | 第39-48页 |
·反应装置 | 第39-40页 |
·活性污泥来源 | 第40-41页 |
·实验水质 | 第41页 |
·主要药品 | 第41-42页 |
·主要试剂的配制 | 第42-44页 |
·实验仪器 | 第44页 |
·实验方法 | 第44-48页 |
·污泥接种及驯化 | 第44-45页 |
·水质指标的测定 | 第45-47页 |
·CODcr的测定 | 第45页 |
·氨氮的测定 | 第45-46页 |
·总磷的测定 | 第46-47页 |
·总氮的测定 | 第47页 |
·活性污泥指标的测定 | 第47-48页 |
·SV_(30)的测定 | 第47-48页 |
·MLSS的测定 | 第48页 |
·SVI的测定 | 第48页 |
·微生物的检测 | 第48页 |
·结果与分析 | 第48-56页 |
·水质指标标准曲线绘制 | 第48-50页 |
·氨氮标准曲线的绘制 | 第48-49页 |
·总磷标准曲线的绘制 | 第49页 |
·总氦标准曲线的绘制 | 第49-50页 |
·系统对CODcr的去除效果 | 第50-51页 |
·系统对氨氮的去除效果 | 第51-52页 |
·系统对总磷的去除效果 | 第52-53页 |
·系统对总氮的去除效果 | 第53-54页 |
·A/O系统内不同时期SV_(30)、MLSS及SVI的变化 | 第54-55页 |
·A/O系统内不同时期的生物相镜检观察结果 | 第55-56页 |
·本章小结 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-58页 |
第三章 生活污水污泥驯化过程中微生物多样性及演替规律 | 第58-84页 |
·前言 | 第58页 |
·材料与方法 | 第58-72页 |
·活性污泥样品 | 第58-59页 |
·主要生化及分子生物学试剂 | 第59-63页 |
·污泥总DNA提取时所需试剂 | 第59-60页 |
·DGGE制胶所用试剂 | 第60-61页 |
·DGGE胶染色所用试剂 | 第61页 |
·利用16S rDNA方法鉴定时所需试剂 | 第61-62页 |
·提取质粒时所需试剂 | 第62-63页 |
·试剂盒 | 第63-64页 |
·DGGE装置 | 第64页 |
·实验方法 | 第64-72页 |
·活性污泥总DNA提取方法的确定 | 第64-67页 |
·基因组总DNA提取 | 第64-66页 |
·DNA的琼脂糖凝胶电泳检测 | 第66页 |
·DNA含量和纯度的测定 | 第66页 |
·16S rDNA V3区和18S rDNA的PCR扩增 | 第66-67页 |
·DGGE分析 | 第67页 |
·微生物群落结构及演替规律分析 | 第67-71页 |
·基因组总DNA提取及PCR扩增 | 第67页 |
·DGGE分析 | 第67-68页 |
·优势功能菌的片段克隆、测序和分析 | 第68-71页 |
·16S rDNA克隆文库构建及测序 | 第71-72页 |
·16S rDNA片段的PCR扩增 | 第71页 |
·T/A克隆及测序 | 第71-72页 |
·结果与分析 | 第72-81页 |
·活性污泥总DNA提取方法的确定 | 第72-76页 |
·污泥总DNA电泳分析 | 第72页 |
·DNA含量和纯度分析 | 第72-73页 |
·PCR扩增结果分析 | 第73-74页 |
·PCR产物的DGGE分析 | 第74-76页 |
·A/O系统运行效果分析 | 第76-77页 |
·微生物群落结构及演替规律分析 | 第77-81页 |
·基因组DNA的PCR扩增 | 第77-78页 |
·微生物群落多样性分析 | 第78页 |
·微生物群落动态分析 | 第78-80页 |
·优势微生物的片段克隆测序 | 第80-81页 |
·克隆文库结果分析 | 第81页 |
·本章小结 | 第81-82页 |
参考文献 | 第82-84页 |
第四章 生活污水降解菌的分离筛选及初步鉴定 | 第84-108页 |
·前言 | 第84页 |
·材料与方法 | 第84-90页 |
·样品来源 | 第84页 |
·富集及分离培养基 | 第84-85页 |
·有机物水解培养基 | 第85-86页 |
·革兰氏染色时所需主要试剂 | 第86页 |
·模拟污水降解试验装置 | 第86页 |
·实验方法 | 第86-90页 |
·活性污泥微生物的富集 | 第86-87页 |
·初筛 | 第87页 |
·复筛 | 第87-88页 |
·有机物水解试验 | 第87页 |
·菌株的模拟污水降解实验 | 第87-88页 |
·富集菌液与纯菌株的DGGE分析 | 第88-89页 |
·优势功能菌的革兰氏染色 | 第89页 |
·优势功能菌的分子鉴定 | 第89-90页 |
·结果与分析 | 第90-106页 |
·初筛结果 | 第90-92页 |
·复筛结果 | 第92-97页 |
·有机物水解试验结果 | 第92-94页 |
·菌株的模拟污水降解试验结果 | 第94-97页 |
·菌株对模拟污水CODcr的去除效果 | 第94-95页 |
·菌株对模拟污水氨氮的去除效果 | 第95-96页 |
·菌株对模拟污水总磷的去除效果 | 第96-97页 |
·富集菌液与纯菌株的DGGE分析 | 第97-99页 |
·富集菌液总DNA与纯菌株DNA的提取结果 | 第97-98页 |
·富集菌液总DNA与纯菌株DNA的PCR扩增结果 | 第98页 |
·DGGE分析 | 第98-99页 |
·优势功能菌的菌落形态观察 | 第99-100页 |
·优势功能菌的革兰氏染色 | 第100-101页 |
·优势功能菌的分子鉴定结果 | 第101-105页 |
·基因组DNA的PCR扩增 | 第101页 |
·克隆及测序 | 第101-102页 |
·序列比对及系统进化树的构建 | 第102-105页 |
·纯菌株的功能分析 | 第105-106页 |
·本章小结 | 第106页 |
参考文献 | 第106-108页 |
第五章 总结与展望 | 第108-110页 |
附录 | 第110-114页 |
致谢 | 第114-115页 |
攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第115页 |