| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-12页 |
| 文献综述 | 第12-22页 |
| 第一章 CDK9 基因研究进展 | 第12-17页 |
| ·CDK9 的结构 | 第12-13页 |
| ·CDK9 的活性调节 | 第13-15页 |
| ·CDK9 与病毒感染 | 第15-16页 |
| ·CDK9 的其它生物学功能 | 第16-17页 |
| 第二章 PKR 基因研究进展 | 第17-22页 |
| ·PKR 的结构 | 第17-18页 |
| ·PKR 的活性调节 | 第18-19页 |
| ·PKR 与病毒感染 | 第19-20页 |
| ·PKR 的其它生物学功能 | 第20-22页 |
| 试验研究 | 第22-56页 |
| 第三章 H3N2 和H1N1 甲型流感病毒感染对猪CDK9 基因表达的影响 | 第22-35页 |
| ·材料 | 第22-24页 |
| ·毒株 | 第22页 |
| ·主要试剂和工具酶 | 第22-23页 |
| ·主要仪器设备 | 第23页 |
| ·主要试剂配方 | 第23-24页 |
| ·方法 | 第24-29页 |
| ·流感病毒人工感染仔猪 | 第24页 |
| ·石蜡切片制备 | 第24-25页 |
| ·HE 染色程序 | 第25-26页 |
| ·Real-time PCR 检测CDK9 的mRNA 表达 | 第26-28页 |
| ·免疫组化分析CDK9 蛋白表达 | 第28-29页 |
| ·结果分析 | 第29-33页 |
| ·HE 染色结果 | 第29-30页 |
| ·H3N2 和H1N1 甲型流感病毒感染后CDK9 基因mRNA 的相对表达量 | 第30-31页 |
| ·H3N2 和H1N1 甲型流感病毒感染后CDK9 阳性细胞的定位 | 第31-32页 |
| ·H3N2 和H1N1 甲型流感病毒感染仔猪后CDK9 表达量的变化 | 第32-33页 |
| ·讨论 | 第33-34页 |
| ·小结 | 第34-35页 |
| 第四章 H3N2 和H1N1 甲型流感病毒感染对猪PKR 基因表达的影响 | 第35-42页 |
| ·材料 | 第35-36页 |
| ·主要试剂和工具酶 | 第35页 |
| ·主要仪器设备 | 第35页 |
| ·主要试剂配方 | 第35-36页 |
| ·方法 | 第36-38页 |
| ·Real-time PCR 检测PKR 的mRNA 表达 | 第36-37页 |
| ·免疫组化分析PKR 蛋白表达 | 第37-38页 |
| ·结果分析 | 第38-40页 |
| ·H3N2 和H1N1 甲型流感病毒感染后PKR 基因mRNA 的相对表达量 | 第38-39页 |
| ·H3N2 和H1N1 甲型流感病毒感染后PKR 阳性细胞的定位 | 第39-40页 |
| ·H3N2 和H1N1 甲型流感病毒感染后PKR 阳性细胞数量的影响 | 第40页 |
| ·讨论 | 第40-41页 |
| ·小结 | 第41-42页 |
| 第五章 H3N2 和H1N1 甲型流感病毒感染后下调的PKR 基因的体外表达 | 第42-56页 |
| ·材料 | 第42-43页 |
| ·组织、菌种及载体 | 第42页 |
| ·主要试剂和工具酶 | 第42-43页 |
| ·主要仪器设备 | 第43页 |
| ·方法 | 第43-50页 |
| ·猪PKR 基因的实验克隆 | 第43-46页 |
| ·猪PKR 在大肠杆菌中的表达 | 第46-48页 |
| ·猪PKR 在SUVECs 中的表达 | 第48-50页 |
| ·结果分析 | 第50-55页 |
| ·目的片段扩增结果 | 第50-51页 |
| ·原核目的片段的扩增结果 | 第51页 |
| ·猪PKR 原核表达载体酶切鉴定结果 | 第51-52页 |
| ·SDS-PAGE 检测原核表达的目的蛋白结果 | 第52-53页 |
| ·真核目的片段的扩增结果 | 第53页 |
| ·真核载体双酶切鉴定结果 | 第53-54页 |
| ·pDsRed1-PKR 质粒转染SUVECs 的荧光显微观察 | 第54页 |
| ·PKR 融合蛋白的Western blot 检测 | 第54-55页 |
| ·讨论 | 第55页 |
| ·小结 | 第55-56页 |
| 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 个人简介 | 第66页 |
