| 目录 | 第1-11页 |
| 图表目录 | 第11-13页 |
| 缩略语 | 第13-16页 |
| 中文摘要 | 第16-19页 |
| 英文摘要 | 第19-24页 |
| 第一部 分转C_4光合酶基因水稻的光合生理特性 | 第24-47页 |
| 第一章 转C_4光合酶基因水稻及原种的CO_2交换和荧光特性 | 第24-36页 |
| 摘要 | 第24页 |
| 引言 | 第24-25页 |
| 1 材料与方法 | 第25-27页 |
| ·植物材料 | 第25页 |
| ·C_4酶活性测定 | 第25-27页 |
| ·PEPC酶活性测定 | 第26页 |
| ·PPDK酶活性测定 | 第26页 |
| ·ME酶活性测定 | 第26页 |
| ·MDH酶活性测定 | 第26-27页 |
| ·叶片光—光合曲线测定 | 第27页 |
| ·叶片叶绿素荧光参数的测定 | 第27页 |
| ·光抑制/光氧化处理 | 第27页 |
| ·荧光动力学参数的测定 | 第27页 |
| 2 结果与分析 | 第27-32页 |
| ·转C_4光合酶基因水稻叶片内的光合酶活性 | 第27-28页 |
| ·转C_4光合酶基因水稻叶片光合作用的光响应 | 第28-30页 |
| ·转C_4光合酶基因水稻叶片叶绿素荧光参数的变化 | 第30-32页 |
| ·转C_4光合酶基因水稻的光抑制表现 | 第30-31页 |
| ·转C_4光合酶基因水稻的光氧化表现 | 第31-32页 |
| 3 讨论 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-36页 |
| 第二章 构建类似C_4水稻的关键因子 | 第36-47页 |
| 摘要 | 第36页 |
| 引言 | 第36-37页 |
| 1 材料与方法 | 第37-40页 |
| ·植物材料 | 第37页 |
| ·实验方法 | 第37-40页 |
| ·C_4酶活性测定 | 第37-38页 |
| ·PEPC酶活性测定 | 第37页 |
| ·PPDK酶活性测定 | 第37-38页 |
| ·ME酶活性测定 | 第38页 |
| ·MDH酶活性测定 | 第38页 |
| ·光合速率测定 | 第38页 |
| ·活性氧代谢指标的测定 | 第38-40页 |
| ·超氧歧化酶(SOD)活性测定 | 第39页 |
| ·过氧化物酶(POD)活性测定 | 第39页 |
| ·O_2(?)产生速率测定 | 第39-40页 |
| ·丙二醛(MDA)的含量测定 | 第40页 |
| ·蛋白质的含量测定 | 第40页 |
| 2 结果与分析 | 第40-43页 |
| ·转C_4光合酶基因水稻叶片内的光合酶活性 | 第40页 |
| ·转C_4基因水稻在高光强下的光合速率 | 第40-41页 |
| ·ATP处理对不同转C_4基因水稻叶切片光合放氧速率的影响 | 第41-42页 |
| ·不同转C_4基因水稻的光氧化特性 | 第42-43页 |
| 3 讨论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-47页 |
| 第二部分 转PEPC基因水稻的光合生理特性 | 第47-72页 |
| 第三章 转PEPC基因水稻的光合能力及光保护效应 | 第47-60页 |
| 摘要 | 第47页 |
| 引言 | 第47-48页 |
| 1 材料与方法 | 第48-51页 |
| ·植物材料 | 第48页 |
| ·测定地点一天中光强和温度的日变化 | 第48-49页 |
| ·光合放氧测定及DCDP的应用 | 第49页 |
| ·叶片光合放氧速率的测定 | 第49页 |
| ·抑制剂DCDP的应用 | 第49页 |
| ·叶绿素荧光参数的测定 | 第49页 |
| ·活性氧代谢指标的测定 | 第49-51页 |
| ·蛋白质含量测定 | 第49-50页 |
| ·超氧歧化酶(SOD)活性测定 | 第50页 |
| ·过氧化物酶(POD)活性测定 | 第50页 |
| ·O_2~T产生速率测定 | 第50页 |
| ·丙二醛(MDA)的含量测定 | 第50-51页 |
| ·505nm处吸光值日变化的测定 | 第51页 |
| 2 结果与分析 | 第51-55页 |
| ·自然条件和光抑制条件下DCDP对不同基因型水稻光合速率的影响 | 第51-52页 |
| ·不同基因型水稻叶绿素荧光参数的日变化 | 第52-54页 |
| ·转PEPC基因水稻活性氧清除相关的酶活性的日变化 | 第54-55页 |
| 3 讨论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 第四章 转PEPC基因水稻种质的稳定光合生理特性 | 第60-72页 |
| 摘要 | 第60页 |
| 引言 | 第60页 |
| 1 材料与方法 | 第60-64页 |
| ·植物材料 | 第60-61页 |
| ·PEPC酶活性测定 | 第61页 |
| ·光抑制/光氧化处理 | 第61页 |
| ·生理特性测定方法 | 第61-64页 |
| ·叶片光合速率的测定 | 第61页 |
| ·叶绿素荧光参数的测定 | 第61-62页 |
| ·活性氧代谢关键酶的测定 | 第62-63页 |
| ·超氧歧化酶(SOD)活性测定 | 第62页 |
| ·过氧化物酶(POD)活性测定 | 第62页 |
| ·蛋白质含量测定 | 第62-63页 |
| ·有关活性氧化代谢指标的测定 | 第63页 |
| ·O_2~T产生速率测定 | 第63页 |
| ·丙二醛(MDA)的含量测定 | 第63页 |
| ·~(14)CO_2的固定和中间代谢产物的检测 | 第63-64页 |
| ·稳定碳同位素比的测定 | 第64页 |
| 2 结果与分析 | 第64-68页 |
| ·转PEPC基因水稻是C_3植物,还是C_4植物? | 第64-65页 |
| ·转PEPC基因水稻光合特性的表现 | 第65-66页 |
| ·转PEPC基因水稻的光抑制表现 | 第66-67页 |
| ·转PEPC基因水稻的光氧化表现 | 第67-68页 |
| 3 讨论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-72页 |
| 第三部分 转PEPC基因水稻花粉株系的光合生理特性 | 第72-111页 |
| 第五章 转PEPC基因水稻花粉株系不同生育期的光合色素含量,净光合速率,水分利用效率 | 第72-82页 |
| 摘要 | 第72页 |
| 引言 | 第72-73页 |
| 1 材料与方法 | 第73-74页 |
| ·植物材料 | 第73-74页 |
| ·转PEPC基因水稻的定向选育 | 第73页 |
| ·JAAS45花粉株系的获得 | 第73-74页 |
| ·实验方法 | 第74页 |
| ·叶绿素含量的测定 | 第74页 |
| ·叶片表观光合速率的测定 | 第74页 |
| 2 结果与分析 | 第74-78页 |
| ·JAAS45与父母本不同生育期叶片单位叶面积色素含量的比较 | 第74-76页 |
| ·JAAS45与父母本不同生育期净光合速率的日变化 | 第76-77页 |
| ·JAAS45与父母本不同生育期水分利用效率的日变化 | 第77-78页 |
| 3 讨论 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-82页 |
| 第六章 转PEPC基因水稻花粉株系的抗光氧化特性 | 第82-95页 |
| 摘要 | 第82页 |
| 引言 | 第82-83页 |
| 1 材料与方法 | 第83-86页 |
| ·植物材料 | 第83-84页 |
| ·转PEPC基因水稻的定向选育 | 第83页 |
| ·JAAS45花粉株系的获得 | 第83-84页 |
| ·光氧化处理 | 第84页 |
| ·叶绿素含量测定 | 第84页 |
| ·酶活性测定 | 第84-85页 |
| ·过氧化物酶(POD)活性测定 | 第84-85页 |
| ·超氧歧化酶(SOD)活性测定 | 第85页 |
| ·蛋白质含量测定 | 第85页 |
| ·有关活性氧指标的测定 | 第85-86页 |
| ·O_2~T产生速率测定 | 第85页 |
| ·丙二醛(MDA)的含量测定 | 第85-86页 |
| ·叶绿素荧光动力学参数的测定 | 第86页 |
| 2 结果与分析 | 第86-90页 |
| ·光氧化处理过程中叶片叶绿素含量和蛋白质含量的变化 | 第86-87页 |
| ·光氧化处理过程中叶片叶绿素荧光参数的变化 | 第87-88页 |
| ·光氧化处理过程中叶片活性氧的积累 | 第88-89页 |
| ·光氧化处理过程中叶片活性氧清除酶活性的变化 | 第89-90页 |
| 3 讨论 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-95页 |
| 第七章 转PEPC基因水稻花粉株系的光合生理遗传特点 | 第95-111页 |
| 摘要 | 第95页 |
| 引言 | 第95-96页 |
| 1 材料与方法 | 第96-99页 |
| ·植物材料 | 第96页 |
| ·转PEPC基因水稻的定向选育 | 第96页 |
| ·JAAS45花粉株系的获得 | 第96页 |
| ·转育植株目的基因的检测 | 第96-97页 |
| ·PEPC活性的测定 | 第97页 |
| ·叶片CO_2气体交换速率测定 | 第97-98页 |
| ·自然条件下叶片光合速率的测定 | 第97页 |
| ·光合速率对光强的响应 | 第97页 |
| ·四碳酸处理的叶片光合速率测定 | 第97-98页 |
| ·叶片叶绿素荧光参数的测定 | 第98页 |
| ·光抑制/氧化处理 | 第98页 |
| ·四碳酸处理的叶片叶绿素荧光测定 | 第98页 |
| ·叶片叶绿素荧光参数的测定 | 第98页 |
| ·稳定碳同位素比的测定 | 第98-99页 |
| 2 结果与分析 | 第99-106页 |
| ·分子标记检测 | 第99页 |
| ·JAAS45、9516和PC的PEPC活性 | 第99-100页 |
| ·JAAS45、PC和9516的光-光合曲线的比较 | 第100页 |
| ·在自然条件下,JAAS45、9516和PC的饱和光合速率变化 | 第100-101页 |
| ·JAAS45、PC和9516的光抑制和光氧化特性 | 第101-103页 |
| ·JAAS45、PC和9516的C_4光合微循环 | 第103-105页 |
| ·OAA、MA和PEP分别对叶片CO_2气体交换的影响 | 第103-104页 |
| ·OAA、MA、PEP分别对叶片叶绿素荧光参数的影响 | 第104-105页 |
| ·花粉株系JAAS45仍是C_3植物 | 第105-106页 |
| 3 讨论 | 第106-107页 |
| 参考文献 | 第107-111页 |
| 第四部分 文献综述——运用C_4光合机理,提高C_3植物的光合速率 | 第111-141页 |
| 1 光合作用的C_3途径和C_4途径 | 第111-113页 |
| 2 C_4光合途径在C_3植物中的表达 | 第113-121页 |
| ·C_3植物中C_4途径代谢酶特性研究 | 第114-116页 |
| ·C_4途径的酶分子生物学的研究进展 | 第116-118页 |
| ·影响C_4途径在C_3植物中的表达的因素 | 第118-119页 |
| ·环境因子的影响 | 第118页 |
| ·植物不同发育阶段的影响 | 第118-119页 |
| ·C_4途径在C_3植物中作用机理的探讨 | 第119-121页 |
| ·碳酸酐酶(CA)作用机理 | 第119页 |
| ·叶绿体是CO_2的浓缩部位 | 第119-120页 |
| ·C_4循环途径 | 第120-121页 |
| 3 利用转基因技术提高C_3植物光合效率的可行性 | 第121-122页 |
| 4 C_4途经基因转C_3植物的基因工程研究 | 第122-132页 |
| ·C_4植物中位于叶肉细胞的C_4酶 | 第123-128页 |
| ·磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶基因(PEPC) | 第123-126页 |
| ·PEPC转基因的研究进展 | 第123-125页 |
| ·PEPC转基因的生理效应 | 第125-126页 |
| ·丙酮酸双激酶基因(PPDK) | 第126-128页 |
| ·PPDK转基因的研究进展 | 第126-127页 |
| ·PPDK转基因的生理效应 | 第127-128页 |
| ·位于C_4植物鞘细胞的酶 | 第128-129页 |
| ·NADP—ME | 第128-129页 |
| ·PEP—羧激酶(PEP—CK) | 第129页 |
| ·位于C_4植物鞘细胞的酶 | 第129-132页 |
| ·NADP—ME | 第129-130页 |
| ·PEP—羧激酶(PEP—CK) | 第130-132页 |
| ·多基因的共表达 | 第132页 |
| 参考文献 | 第132-141页 |
| 致谢 | 第141-142页 |
| 2004年9月—2007年4月在读期间发表论文和获奖情况 | 第142-143页 |
