| 中文摘要 | 第1-4页 |
| 英文摘要 | 第4-7页 |
| 缩略词 | 第7-8页 |
| 第一章 前言 | 第8-21页 |
| ·植物基因转化的研究概况 | 第8-12页 |
| ·转化的受体系统 | 第8-9页 |
| ·植物遗传转化的载体系统 | 第9-10页 |
| ·选择标记基因和报告基因 | 第10-11页 |
| ·基因转移系统 | 第11-12页 |
| ·农杆菌转化的机理研究 | 第12-17页 |
| ·农杆菌的趋化性和对植物伤口组织的附着 | 第13-14页 |
| ·vir基因的诱导 | 第14-15页 |
| ·T-DNA的加工及其T-复合体的跨膜转移 | 第15-16页 |
| ·T-DNA的整合及在植物中的表达 | 第16-17页 |
| ·小麦基因转化的研究进展 | 第17-19页 |
| ·目前小麦转化的主要方法 | 第18页 |
| ·小麦基因转化存在的主要问题 | 第18-19页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第19-21页 |
| 第二章 材料和方法 | 第21-28页 |
| ·试验材料 | 第21-23页 |
| ·小麦材料 | 第21页 |
| ·根癌农杆菌菌株 | 第21页 |
| ·培养基及溶液 | 第21-23页 |
| ·供试表面活性剂 | 第23页 |
| ·生化试剂 | 第23页 |
| ·主要实验仪器 | 第23页 |
| ·试验方法 | 第23-28页 |
| ·植物受体材料的准备 | 第23-24页 |
| ·农杆菌菌株的培养及保存 | 第24页 |
| ·接种方法 | 第24-25页 |
| ·植物材料中含农杆菌量的检测 | 第25页 |
| ·植物组织的冰冻切片 | 第25页 |
| ·农杆菌的CLSM检测 | 第25页 |
| ·GUS组织学检测 | 第25-26页 |
| ·大肠杆菌质粒DNA的提取 | 第26页 |
| ·植物总DNA的提取(CTAB法) | 第26-27页 |
| ·转化植株的筛选 | 第27页 |
| ·转化体的PCR检测 | 第27-28页 |
| 第三章 结果与分析 | 第28-50页 |
| ·花器浸沾处理中影响GUS瞬时表达效率的因素 | 第28-34页 |
| ·小麦花期影响GUS瞬时表达的研究 | 第28-31页 |
| ·不同的表面活性剂对GUS瞬时表达的影响 | 第31页 |
| ·接种菌液的其它成分对GUS瞬时表达效率的影响 | 第31-32页 |
| ·对经GUS组织学染色的小麦花器进行组织切片的观察 | 第32-33页 |
| ·小结及讨论 | 第33-34页 |
| ·农杆菌处理小麦种子萌芽的研究 | 第34-50页 |
| ·接种方法的初探 | 第34-36页 |
| ·利用表面活性剂促进受体材料对农杆菌的吸收 | 第36-37页 |
| ·利用真空渗透的方法促进受体材料对农杆菌的吸收 | 第37页 |
| ·受体材料组织切片的激光共聚焦观察(CLSM) | 第37-39页 |
| ·寄存于受体部位农杆菌vir基因表达 | 第39-43页 |
| ·影响种子萌芽转化法GUS瞬时表达的因素 | 第43-48页 |
| ·转化体的筛选 | 第48-50页 |
| 第四章 讨论和结论 | 第50-53页 |
| ·讨论 | 第50-52页 |
| ·结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 作者简历 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59页 |