| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-39页 |
| ·引言 | 第12-13页 |
| ·荷叶中生理活性成分研究概况 | 第13-17页 |
| ·黄酮、生物碱及挥发性精油 | 第13-16页 |
| ·有机酸类及鬼臼毒素 | 第16-17页 |
| ·多糖 | 第17页 |
| ·其他化学成分 | 第17页 |
| ·荷叶中活性成分的分离纯化及分析方法 | 第17-23页 |
| ·黄酮分离纯化及分析方法 | 第17-18页 |
| ·生物碱分离纯化及分析方法 | 第18-21页 |
| ·多糖分离纯化及分析方法 | 第21-23页 |
| ·荷叶中活性成分的生理功能及应用研究 | 第23-31页 |
| ·荷叶黄酮及生物碱提取物生理功能及应用研究 | 第23-27页 |
| ·多糖的生理功能及应用研究 | 第27-31页 |
| ·黄酮及生物碱对DNA和BSA的互相作用研究 | 第31-37页 |
| ·药物与DNA相互作用研究进展 | 第31-36页 |
| ·药物与血清蛋白相互作用研究进展 | 第36-37页 |
| ·本课题研究的目的、意义及主要内容 | 第37-39页 |
| ·课题来源 | 第37页 |
| ·研究价值与意义 | 第37-38页 |
| ·主要研究内容 | 第38-39页 |
| 第二章 荷叶黄酮、生物碱、多糖同步分离提取与纯化 | 第39-79页 |
| ·引言 | 第39页 |
| ·试验材料与仪器 | 第39-40页 |
| ·材料 | 第39页 |
| ·试剂 | 第39-40页 |
| ·仪器及设备 | 第40页 |
| ·试验方法 | 第40-51页 |
| ·同步分离提取荷叶三种活性成分的工艺研究 | 第40页 |
| ·标准曲线的制备 | 第40-43页 |
| ·原材料中黄酮、生物碱、多糖含量的测定 | 第43-44页 |
| ·荷叶黄酮、生物碱、多糖的提取的单因素试验 | 第44-46页 |
| ·荷叶黄酮、生物碱、多糖提取的正交试验 | 第46-47页 |
| ·荷叶黄酮、生物碱、多糖提取的批量试验 | 第47-48页 |
| ·荷叶黄酮、生物碱、多糖粗提物的紫外扫描吸收光谱 | 第48页 |
| ·荷叶黄酮的纯化 | 第48-49页 |
| ·荷叶生物碱的纯化 | 第49-50页 |
| ·荷叶多糖的脱色及除蛋白工艺 | 第50-51页 |
| ·结果与分析 | 第51-72页 |
| ·原料中荷叶黄酮、生物碱、多糖含量的测定 | 第51-52页 |
| ·荷叶黄酮、生物碱、多糖的提取试验 | 第52-58页 |
| ·荷叶黄酮、生物碱、多糖提取的正交试验 | 第58-61页 |
| ·荷叶黄酮、生物碱、多糖提取的批量试验 | 第61页 |
| ·荷叶黄酮、生物碱、多糖粗提物的紫外扫描吸收光谱 | 第61-63页 |
| ·荷叶黄酮的纯化 | 第63-67页 |
| ·荷叶生物碱的纯化 | 第67-69页 |
| ·荷叶多糖的脱色及除蛋白工艺 | 第69-72页 |
| ·讨论 | 第72-76页 |
| ·提取因素对荷叶黄酮、生物碱同步分离提取的影响 | 第72-74页 |
| ·纯化工艺对荷叶黄酮、生物碱纯化的影响 | 第74-75页 |
| ·荷叶多糖的纯化 | 第75-76页 |
| ·小结 | 第76-79页 |
| 第三章 HPLC-MS法测定荷叶生物碱提取物的组成成分 | 第79-90页 |
| ·引言 | 第79-80页 |
| ·材料与仪器 | 第80页 |
| ·材料及试剂 | 第80页 |
| ·仪器及设备 | 第80页 |
| ·试验方法 | 第80-82页 |
| ·样品的制备 | 第80页 |
| ·HPLC检测波长的选择 | 第80页 |
| ·工作曲线的绘制 | 第80-81页 |
| ·碱性条件下的色谱分析 | 第81页 |
| ·中性条件下的色谱分析 | 第81页 |
| ·方法学考察 | 第81-82页 |
| ·质谱条件 | 第82页 |
| ·结果与分析 | 第82-87页 |
| ·HPLC检测波长选择结果与分析 | 第82-83页 |
| ·工作曲线的绘制 | 第83页 |
| ·碱性条件下荷叶生物碱提取物的HPLC色谱图 | 第83页 |
| ·中性条件下荷叶生物碱提取物的HPLC色谱图 | 第83-84页 |
| ·由HPLC所确定的五种主要成分的紫外扫描特征吸收谱图 | 第84页 |
| ·方法学考察 | 第84页 |
| ·质谱模式的选择 | 第84-85页 |
| ·生物碱的定性鉴定 | 第85-87页 |
| ·讨论 | 第87-89页 |
| ·对两种色谱条件的分析 | 第87页 |
| ·对生物碱质图谱的分析 | 第87-89页 |
| ·本章小结 | 第89-90页 |
| 第四章 高速逆流色谱分离纯化荷叶生物碱提取物中五种生物碱 | 第90-103页 |
| ·引言 | 第90-91页 |
| ·材料与仪器 | 第91页 |
| ·材料及试剂 | 第91页 |
| ·仪器及设备 | 第91页 |
| ·试验方法 | 第91-94页 |
| ·样品的制备 | 第91-92页 |
| ·溶剂体系的选择 | 第92页 |
| ·HSCCC操作条件的优侧 | 第92-93页 |
| ·HSCCC分离的过程 | 第93-94页 |
| ·HPLC分析条件 | 第94页 |
| ·结果与分析 | 第94-101页 |
| ·溶剂体系选择 | 第94-95页 |
| ·HSCCC操作条件的优化 | 第95-97页 |
| ·HSCCC分离的效果 | 第97-99页 |
| ·HPLC操作条件优化及产品纯度测定 | 第99-101页 |
| ·讨论 | 第101-102页 |
| ·溶剂体系的选择对荷叶生物碱分离效果的影响 | 第101-102页 |
| ·HSCCC操作条件优化的分析 | 第102页 |
| ·本章小结 | 第102-103页 |
| 第五章 荷叶生物碱提取物和荷叶碱与DNA和BSA相互作用的研究 | 第103-117页 |
| ·引言 | 第103页 |
| ·材料与仪器 | 第103-104页 |
| ·材料及试剂 | 第103-104页 |
| ·仪器及设备 | 第104页 |
| ·试验方法 | 第104-106页 |
| ·DNA对NUC和ALKE紫外吸收光谱的影响 | 第104页 |
| ·DNA对NUC和ALKE的荧光光谱的影响 | 第104-105页 |
| ·盐效应 | 第105页 |
| ·阴离子效应 | 第105页 |
| ·NUC和ALKE对NR-DNA的同步荧光光谱的影响 | 第105-106页 |
| ·NUC和ALKE与牛血清蛋白(BSA)的相互作用 | 第106页 |
| ·结果与分析 | 第106-112页 |
| ·DNA对NUC和ALKE的紫外吸收光谱的影响 | 第106-107页 |
| ·DNA对NUC和ALKE的荧光光谱的影响 | 第107页 |
| ·盐效应 | 第107页 |
| ·阴离子效应 | 第107-108页 |
| ·NUC和ALKE对NR-DNA的同步荧光光谱的影响 | 第108-109页 |
| ·NUC和ALKE与牛血清蛋白(BSA)作用的研究 | 第109-112页 |
| ·讨论 | 第112-116页 |
| ·NUC和ALKE对DNA相互作用的机理 | 第112-114页 |
| ·NUC和ALKE与牛血清蛋白(BSA)相互作用的机理 | 第114-116页 |
| ·本章小结 | 第116-117页 |
| 第六章 结论 | 第117-120页 |
| 参考文献 | 第120-132页 |
| 致谢 | 第132-133页 |
| 攻读硕士学位期间的科研成果 | 第133页 |
