| 摘要 | 第3-6页 |
| abstract | 第6-9页 |
| 中英文缩略词表 | 第12-14页 |
| 第1章 前言 | 第14-17页 |
| 第2章 材料与方法 | 第17-36页 |
| 2.1 材料 | 第17-22页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第17页 |
| 2.1.2 实验药物 | 第17页 |
| 2.1.3 主要实验试剂 | 第17-19页 |
| 2.1.4 主要实验仪器 | 第19-20页 |
| 2.1.5 主要实验试剂配制方法 | 第20-22页 |
| 2.2 研究方法及内容 | 第22-36页 |
| 2.2.1 CIA大鼠滑膜细胞培养 | 第22-23页 |
| 2.2.2 Caspase抑制剂作用条件的优化 | 第23-24页 |
| 2.2.3 瑞香素诱导CIA大鼠滑膜细胞凋亡的机制研究 | 第24-35页 |
| 2.2.4 统计学处理 | 第35-36页 |
| 第3章 结果 | 第36-50页 |
| 3.1 Caspase抑制剂作用条件的优化结果 | 第36-37页 |
| 3.2 瑞香素对滑膜细胞凋亡形态的影响 | 第37-38页 |
| 3.3 瑞香素对滑膜细胞超微结构的影响 | 第38-40页 |
| 3.4 瑞香素对滑膜细胞凋亡率的影响 | 第40-41页 |
| 3.5 瑞香素对滑膜细胞中死亡受体途径FasL、TNF、Caspase-8,线粒体途径Cyt-c、Bax、Bcl-2、Caspase-9,两条途径共同下游Caspase-3及关联基因BidmRNA表达的影响 | 第41-46页 |
| 3.5.1 RNA纯度鉴定 | 第41-42页 |
| 3.5.2 RNA完整性鉴定 | 第42页 |
| 3.5.3 Real-timePCR测定各基因扩增产物的熔解曲线 | 第42-43页 |
| 3.5.4 Real-timePCR测定各基因扩增产物的扩增曲线 | 第43-44页 |
| 3.5.5 各组滑膜细胞中FasL、TNF、Cyt-c、Bid mRNA的相对表达量 | 第44页 |
| 3.5.6 各组滑膜细胞中Bax、Bcl-2 mRNA的相对表达量及两者表达比率 | 第44-45页 |
| 3.5.7 各组滑膜细胞中Caspase-3、Caspase-8、Caspase-9 mRNA的相对表达量 | 第45-46页 |
| 3.6 瑞香素对滑膜细胞中死亡受体途径Caspase-8,线粒体途径Bax、Bcl-2、Caspase-9,两条途径共同下游Caspase-3蛋白表达的影响 | 第46-48页 |
| 3.6.1 各组滑膜细胞中Bax、Bcl-2蛋白的相对表达量及两者表达比率 | 第46-47页 |
| 3.6.2 各组滑膜细胞中Caspase-3、Caspase-8、Caspase-9蛋白的相对表达量 | 第47-48页 |
| 3.7 瑞香素对滑膜细胞中线粒体释放Cyt-c的影响 | 第48-50页 |
| 第4章 讨论 | 第50-57页 |
| 4.1 瑞香素诱导滑膜细胞凋亡的作用及形态学影响 | 第51-52页 |
| 4.2 瑞香素在滑膜细胞死亡受体途径中的作用 | 第52-53页 |
| 4.3 瑞香素在滑膜细胞线粒体途径中的作用 | 第53-55页 |
| 4.4 瑞香素在滑膜细胞死亡受体途径和线粒体途径交互点的作用 | 第55页 |
| 4.5 结语 | 第55-57页 |
| 第5章 结论 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第65-66页 |
| 综述 | 第66-76页 |
| 参考文献 | 第72-76页 |
