| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第1章 引言 | 第11-19页 |
| 1.1 研究背景 | 第11-15页 |
| 1.1.1 化疗致肠粘膜损伤概述 | 第11页 |
| 1.1.2 化疗致肠粘膜损伤的病理机制 | 第11-12页 |
| 1.1.3 超氧化物歧化酶是治疗肠粘膜损伤的潜在药物 | 第12-14页 |
| 1.1.4 新型重组高稳定性SOD的优势 | 第14-15页 |
| 1.1.5 MS-SOD可改善斑马鱼结肠炎 | 第15页 |
| 1.2 MS-SOD的研究思路 | 第15-17页 |
| 1.3 研究的目的和意义 | 第17-19页 |
| 第2章 材料与方法 | 第19-35页 |
| 2.1 药物与试剂 | 第19-20页 |
| 2.2 实验仪器与耗材 | 第20页 |
| 2.3 实验常规试剂配置方法 | 第20-21页 |
| 2.4 实验细胞 | 第21-22页 |
| 2.5 RAW264.7炎症模型的建立 | 第22页 |
| 2.6 MS-SOD对LPS诱导的RAW264.7炎症细胞模型的作用 | 第22-23页 |
| 2.7 实验动物 | 第23页 |
| 2.8 动物实验设计 | 第23-25页 |
| 2.8.1 探究5-FU致小鼠肠粘膜损伤模型给药剂量及时间 | 第23-24页 |
| 2.8.2 探索MS-SOD对5-FU致小鼠肠粘膜损伤保护作用的有效剂量 | 第24页 |
| 2.8.3 探索MS-SOD对5-FU致小鼠肠粘膜损伤保护作用的有效时间 | 第24-25页 |
| 2.8.4 探究MS-SOD的安全性 | 第25页 |
| 2.9 制备抗MS-SOD的阳性抗体 | 第25页 |
| 2.10 检测MS-SOD的免疫原性 | 第25页 |
| 2.11 总RNA抽提和Real-time PCR检测 | 第25-27页 |
| 2.11.1 总RNA抽提 | 第25-26页 |
| 2.11.2 反转录 | 第26-27页 |
| 2.11.3 Real-time quantitative PCR (RT-qPCR) | 第27页 |
| 2.12 蛋白免疫印迹反应(Western blotting) | 第27-28页 |
| 2.12.1 蛋白样品收集 | 第27-28页 |
| 2.12.2 测蛋白浓度 | 第28页 |
| 2.12.3 Western blotting步骤 | 第28页 |
| 2.13 组织中活性氧自由基(ROS)的检测 | 第28页 |
| 2.14 组织抗氧化能力检测 | 第28-29页 |
| 2.15 组织超氧化物检测 | 第29页 |
| 2.16 组织超氧化物歧化酶检测 | 第29页 |
| 2.17 组织髓过氧化物酶MPO含量检测 | 第29-30页 |
| 2.18 炎症因子含量检测 | 第30页 |
| 2.19 组织切片制作及H&E染色 | 第30-31页 |
| 2.20 TUNEL染色检测细胞凋亡 | 第31-32页 |
| 2.21 小鼠粪便DNA提取 | 第32-33页 |
| 2.22 小鼠粪便中肠道菌群二代测序及分析 | 第33-34页 |
| 2.23 血清生化指标检测 | 第34页 |
| 2.24 数据统计分析 | 第34-35页 |
| 第3章 结果 | 第35-61页 |
| 3.1 MS-SOD对LPS诱导的RAW264.7炎症细胞模型的影响 | 第35-36页 |
| 3.2 5-FU致小鼠肠粘膜损伤模型给药剂量及时间的确立 | 第36-37页 |
| 3.3 MS-SOD对5-FU致小鼠肠粘膜损伤保护作用的有效剂量 | 第37-42页 |
| 3.4 MS-SOD对5-FU致小鼠肠粘膜损伤保护作用的有效时间 | 第42-48页 |
| 3.5 MS-SOD对5-FU致小鼠肠粘膜损伤保护作用的机制探讨 | 第48-58页 |
| 3.5.1 MS-SOD对模型小鼠炎症水平的影响 | 第48-51页 |
| 3.5.2 MS-SOD对模型小鼠小肠组织氧化应激水平的影响 | 第51-54页 |
| 3.5.3 MS-SOD对模型小鼠肠道菌群的影响 | 第54-58页 |
| 3.6 MS-SOD的安全性与免疫原性 | 第58-61页 |
| 第4章 讨论 | 第61-65页 |
| 第5章 结论与展望 | 第65-67页 |
| 5.1 结论 | 第65页 |
| 5.2 展望 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-73页 |
| 附录 | 第73-75页 |
| 致谢 | 第75-77页 |
| 作者简历及攻读学位期间发表的学术论文与研究成果 | 第77-82页 |
