| 中文摘要 | 第8-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 1 引言 | 第11-27页 |
| 1.1 植物多酚类物质的分类 | 第11-12页 |
| 1.2 类黄酮的分类与分布 | 第12-13页 |
| 1.3 类黄酮的功能与功效 | 第13-18页 |
| 1.3.1 类黄酮的医学药用价值 | 第13-14页 |
| 1.3.2 类黄酮对植物的作用 | 第14-15页 |
| 1.3.3 类黄酮对昆虫的作用 | 第15页 |
| 1.3.4 植物代谢过程中类黄酮的积累 | 第15-17页 |
| 1.3.5 UV辐射引起类黄酮的积累 | 第17-18页 |
| 1.4 类黄酮中的重要组分黄酮醇 | 第18-21页 |
| 1.4.1 黄酮醇的结构 | 第18-19页 |
| 1.4.2 黄酮醇的生理功能 | 第19页 |
| 1.4.3 黄酮醇对植物的作用 | 第19-21页 |
| 1.4.4 黄酮醇的重要组分芦丁 | 第21页 |
| 1.5 类黄酮中的重要组分花青素 | 第21-22页 |
| 1.6 类黄酮中的重要组分咖啡酰奎尼酸 | 第22-24页 |
| 1.7 类黄酮的特异性调控因子AtMYB12的研究进展 | 第24-25页 |
| 1.8 调控因子Delila和Rosea1的研究进展 | 第25-26页 |
| 1.9 瞬时表达体系的研究进展 | 第26页 |
| 1.10 本研究的目的与意义 | 第26-27页 |
| 2 材料与方法 | 第27-34页 |
| 2.1 供试材料及培养 | 第27页 |
| 2.2 菌株和载体 | 第27-28页 |
| 2.3 常用酶与生化试剂 | 第28页 |
| 2.4 常用仪器 | 第28页 |
| 2.5 溶液及培养基的配制 | 第28-29页 |
| 2.6 核酸操作及载体构建 | 第29-34页 |
| 2.6.1 植物总DNA的提取 | 第29页 |
| 2.6.2 植物RNA的抽提 | 第29-30页 |
| 2.6.3 RT-PCR方法 | 第30页 |
| 2.6.4 感受态细胞的制备 | 第30-31页 |
| 2.6.5 热激转化大肠杆菌(DH5α) | 第31页 |
| 2.6.6 电转化农杆菌感受态细胞(GV3101) | 第31页 |
| 2.6.7 转化菌落的阳性检测 | 第31页 |
| 2.6.8 质粒DNA的提取 | 第31-32页 |
| 2.6.9 瞬时表达体系的构建 | 第32-33页 |
| 2.6.10 样品制备以及样品中类黄酮和咖啡酰奎尼酸的含量测定 | 第33页 |
| 2.6.11 相关基因表达量的测定(qRT-PCR) | 第33-34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-51页 |
| 3.1 用AtMYB12基因探索烟草中最优瞬时表达体系 | 第34-40页 |
| 3.1.1 瞬时表达载体的构建 | 第34-37页 |
| 3.1.2 烟草中瞬时表达结果分析 | 第37-39页 |
| 3.1.3 瞬时表达载体选择 | 第39-40页 |
| 3.2 多酚合成调控候选基因在烟草中的瞬时表达 | 第40-48页 |
| 3.2.1 SlMYB1正调控烟草中多酚物质含量 | 第40-42页 |
| 3.2.2 SlbHLH96正调控烟草中多酚物质含量 | 第42-44页 |
| 3.2.3 WD40-19正调控烟草中多酚物质含量 | 第44-46页 |
| 3.2.4 SlbHLH072负调控烟草中多酚物质含量 | 第46-48页 |
| 3.3 候选基因与AtMYB12、ROS1基因的共表达分析 | 第48-51页 |
| 4 讨论 | 第51-52页 |
| 5 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-65页 |
| 致谢 | 第65页 |
