| 中文摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 第一章 研究背景 | 第13-17页 |
| 1.1 前言 | 第13页 |
| 1.2 金黄色葡萄球菌的抗药性危机 | 第13-14页 |
| 1.3 金黄色葡萄球菌持留菌的形成与抗菌药物的耐受 | 第14-15页 |
| 1.4 小檗碱的作用研究 | 第15-16页 |
| 1.5 本项目研究的目的和意义 | 第16-17页 |
| 第二章 材料及方法 | 第17-33页 |
| 2.1 材料 | 第17-19页 |
| 2.1.1 实验菌株 | 第17页 |
| 2.1.2 主要的试剂和材料 | 第17-18页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第18-19页 |
| 2.2 方法 | 第19-33页 |
| 2.2.1 技术路线 | 第19页 |
| 2.2.2 试剂的配制 | 第19-20页 |
| 2.2.3 培养基的配制 | 第20-21页 |
| 2.2.4 抗菌药物暴露实验测定不同生长期金黄色葡萄球菌的持留菌形成 | 第21页 |
| 2.2.5 小檗碱抗金黄色葡萄球菌的MIC和MBC测定 | 第21-22页 |
| 2.2.6 抗菌药物暴露试验测定小檗碱抗金黄色葡萄球菌持留菌的作用 | 第22页 |
| 2.2.7 培养基对小檗碱抗金黄色葡萄球菌持留菌的影响 | 第22-23页 |
| 2.2.8 培养基pH对小檗碱抗金黄色葡萄球菌持留菌的影响 | 第23页 |
| 2.2.9 金黄色葡萄球菌Newman株小檗碱处理组和未处理组的总RNA的抽提 | 第23-24页 |
| 2.2.10 转录组测序及生物信息学分析 | 第24-25页 |
| 2.2.11 实时荧光定量PCR验证RNA-seq的结果 | 第25-27页 |
| 2.2.12 耐5倍MIC小檗碱的金黄色葡萄球菌突变株的诱导 | 第27页 |
| 2.2.13 耐5倍MIC小檗碱的金黄色葡萄球菌突变株基因组DNA(gDNA)的提取 | 第27-28页 |
| 2.2.14 gDNA重测序及其生物信息学分析 | 第28页 |
| 2.2.15 普通PCR验证gDNA重测序的突变位点 | 第28-32页 |
| 2.2.16 统计学分析 | 第32-33页 |
| 第三章 结果 | 第33-59页 |
| 3.1 对数期和稳定期金黄色葡萄球菌持留菌形成的筛选 | 第33页 |
| 3.2 小檗碱抗金黄色葡萄球菌的MIC和MBC的测定 | 第33页 |
| 3.3 药物暴露试验测定小檗碱抗对数期和稳定期金黄色葡萄球菌持留菌作用 | 第33-37页 |
| 3.4 培养基对小檗碱抗持留菌的影响 | 第37-39页 |
| 3.5 培养基pH的改变对小檗碱抗金黄色葡萄球菌效果的影响 | 第39-41页 |
| 3.6 RNA-seq检测小檗碱抗金黄色葡萄球菌持留菌过程中相关差异表达基因及qPCR验证结果 | 第41-44页 |
| 3.7 耐5倍MIC小檗碱金黄色葡萄球菌突变株的诱导及基因组DNA提取 | 第44页 |
| 3.8 耐5倍MIC小檗碱金黄色葡萄球菌突变株的基因组测序 | 第44-51页 |
| 3.9 PCR扩增结果 | 第51-53页 |
| 3.10 PCR产物的测序分析结果 | 第53-57页 |
| 3.11 突变基因的功能分类与分析 | 第57-59页 |
| 第四章 讨论 | 第59-63页 |
| 第五章 结论与展望 | 第63-64页 |
| 5.1 结论 | 第63页 |
| 5.2 展望 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-70页 |
| 在学期间的研究成果 | 第70-71页 |
| 中英文对照缩略词表 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
