| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 缩略词表 | 第6-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-23页 |
| 1.雄黄的药用价值 | 第12-15页 |
| 1.1 雄黄的炮制工艺研究 | 第13-15页 |
| 1.1.1 以传统水飞工艺为基础的雄黄炮制方法 | 第13-14页 |
| 1.1.2 以纳米技术为基础的雄黄炮制方法 | 第14页 |
| 1.1.3 以生物浸出工艺为基础的雄黄生物炮制方法 | 第14-15页 |
| 2.A.ferrooxidans生物炮制雄黄的化学基础 | 第15-17页 |
| 2.1 A.ferrooxidans炮制雄黄的直接作用 | 第16页 |
| 2.2 A.ferrooxidans炮制雄黄的间接作用 | 第16页 |
| 2.3 A.ferrooxidans生物炮制雄黄的协同作用 | 第16-17页 |
| 3.A.ferrooxidans浸矿的组学基础 | 第17-19页 |
| 3.1 A.ferrooxidans浸矿过程中相关基因的研究 | 第17页 |
| 3.2 A.ferrooxidans的浸矿过程中相关蛋白的研究 | 第17-18页 |
| 3.3 A.ferrooxidans的浸矿过程中的相关代谢研究 | 第18-19页 |
| 4.雄黄生物浸出液的抗肿瘤作用及机制 | 第19-22页 |
| 4.1 雄黄生物浸出液的抗肿瘤作用 | 第19-20页 |
| 4.2 RBS抗肿瘤机制研究 | 第20-22页 |
| 5.选题依据 | 第22-23页 |
| 第二章 纳米雄黄的生物炮制 | 第23-39页 |
| 1.前言 | 第23-24页 |
| 2.材料与方法 | 第24-27页 |
| 2.1 材料 | 第24页 |
| 2.2 仪器设备 | 第24-25页 |
| 2.3 实验方法 | 第25页 |
| 2.3.1 雄黄粗粉的制备及纯化 | 第25页 |
| 2.3.2 纳米雄黄的制备 | 第25页 |
| 2.3.3 纳米雄黄生物浸出实验 | 第25页 |
| 2.4 分析过程 | 第25-27页 |
| 2.4.1 粒径检测 | 第26页 |
| 2.4.2 砷离子浓度检测 | 第26页 |
| 2.4.3 扫描电镜(SEM) | 第26页 |
| 2.4.4 拉曼分析(Raman) | 第26-27页 |
| 2.4.5 红外光谱(FT-IR) | 第27页 |
| 2.4.6 X射线衍射(XRD) | 第27页 |
| 3.实验结果 | 第27-37页 |
| 3.1 雄黄的粒径分析结果 | 第27-29页 |
| 3.1.1 微米雄黄粒径分析 | 第27页 |
| 3.1.2 转速对雄黄粒径的影响结果 | 第27-28页 |
| 3.1.3 研磨时间对于雄黄粒径的影响结果 | 第28-29页 |
| 3.1.4 球料比对于雄黄粒径的影响结果 | 第29页 |
| 3.2 纳米雄黄的生物炮制结果 | 第29-31页 |
| 3.2.1 雄黄加入时间对于纳米雄黄生物炮制效率的影响 | 第29页 |
| 3.2.2 pH对于纳米雄黄生物炮制效率的影响结果 | 第29-30页 |
| 3.2.3 温度对于纳米雄黄生物浸炮制效率的影响结果 | 第30-31页 |
| 3.2.4 Fe~(2+)浓度对于纳米雄黄生物炮制效率的影响结果 | 第31页 |
| 3.2.5 菌浓度对于纳米雄黄生物炮制效率的影响结果 | 第31页 |
| 3.3 炮制过程中砷浓度变化趋势及其模型分析 | 第31-34页 |
| 3.3.1 炮制过程中砷浓度变化趋势分析 | 第31-32页 |
| 3.3.2 炮制过程中纳米雄黄生物炮制的线性模型 | 第32-33页 |
| 3.3.3 炮制过程中纳米雄黄生物炮制的非线性模型 | 第33-34页 |
| 3.4 纳米雄黄在生物炮制过程中的表面改性 | 第34-37页 |
| 3.4.1 雄黄颗粒样品的SEM分析 | 第34页 |
| 3.4.2 雄黄颗粒样品的XRD分析 | 第34-35页 |
| 3.4.3 雄黄颗粒样品的Raman分析 | 第35-36页 |
| 3.4.4 A.ferrooxidansDLC-5的表面化学基团 | 第36-37页 |
| 4.讨论 | 第37-39页 |
| 第三章 A.ferrooxidansDLC-5炮制纳米雄黄的组学基础 | 第39-57页 |
| 1.前言 | 第39-41页 |
| 2.材料与方法 | 第41-46页 |
| 2.1 菌株、试剂及仪器 | 第41页 |
| 2.2 方法 | 第41-46页 |
| 2.2.1 A.ferrooxidans浸矿基因分析 | 第41-42页 |
| 2.2.1.1 A.ferrooxidans基因组的提取 | 第41页 |
| 2.2.1.2 A.ferrooxidans的浸矿基因的检索 | 第41-42页 |
| 2.2.2 A.ferrooxidansDLC-5差异蛋白分析 | 第42-45页 |
| 2.2.2.1 A.ferrooxidansDLC-5菌沉淀的提取 | 第42页 |
| 2.2.2.2 反复冻融法提取细菌总蛋白 | 第42-43页 |
| 2.2.2.3 细菌蛋白质样品浓度检测 | 第43页 |
| 2.2.2.4 A.ferrooxidansDLC-5蛋白样品的2-DE分析 | 第43-45页 |
| 2.2.3 A.ferrooxidansDLC-5代谢产物分析 | 第45-46页 |
| 2.2.3.1 A.ferrooxidansDLC-5代谢产物的NMR分析 | 第45页 |
| 2.2.3.2 A.ferrooxidansDLC-5代谢产物的LC-MS分析方法 | 第45-46页 |
| 3.实验结果 | 第46-55页 |
| 3.1 A. ferrooxidans DLC-5 的基因分析 | 第46-50页 |
| 3.1.1 A.ferrooxidans菌属间的进化关系 | 第47页 |
| 3.1.2 A.ferrooxidansDLC-5基因草图信息 | 第47-48页 |
| 3.1.3 A.ferrooxidans中参与浸出雄黄的相关基因与蛋白 | 第48-50页 |
| 3.2 A.ferrooxidansDLC-5的蛋白分析 | 第50-53页 |
| 3.2.1 蛋白样品浓度 | 第50页 |
| 3.2.2 双向凝胶电泳蛋白样品浓度检测结果 | 第50-53页 |
| 3.3 A.ferrooxidansDLC-5的代谢产物分析 | 第53-55页 |
| 3.3.1 A.ferrooxidansDLC-5代谢产物的NMR分析 | 第53-54页 |
| 3.3.2 A.ferrooxidansDLC-5代谢产物的LC-MS分析 | 第54-55页 |
| 4.讨论 | 第55-57页 |
| 第四章 总结与讨论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 在学期间的研究成果 | 第68-69页 |
