摘要 | 第3-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
第1章 前言 | 第12-15页 |
第2章 材料与方法 | 第15-22页 |
2.1 试验细胞 | 第15页 |
2.2 主要试剂及仪器 | 第15-17页 |
2.2.1 主要试剂 | 第15-16页 |
2.2.2 主要试剂的配置 | 第16页 |
2.2.3 主要仪器与设备 | 第16-17页 |
2.3 实验方法 | 第17-21页 |
2.3.1 细胞培养 | 第17-19页 |
2.3.2 细胞增殖抑制试验(MTT 法) | 第19页 |
2.3.3 克隆形成实验 | 第19-20页 |
2.3.4 倒置显微镜下细胞形态的观察 | 第20页 |
2.3.5 VEGF 蛋白浓度的测定 | 第20页 |
2.3.6 流式细胞术检测 | 第20-21页 |
2.3.7 二苯胺反应法测定 DNA 片段化比率 | 第21页 |
2.4 统计学方法 | 第21-22页 |
第3章 结果 | 第22-31页 |
3.1 丹参酮ⅡA 对 MDA-MB-231 的生长抑制作用 | 第22-24页 |
3.2 丹参酮ⅡA 对肿瘤细胞克隆形成的抑制作用 | 第24页 |
3.3 不同浓度丹参酮ⅡA 处理后的 MDA-MB-231 细胞形态 | 第24页 |
3.4 ELISA 法检测人乳腺癌 MDA-MB-231 细胞 VEGF 表达 | 第24-26页 |
3.5 丹参酮ⅡA 对乳腺癌细胞周期的影响 | 第26-30页 |
3.6 经不同浓度的丹参酮ⅡA 处理对肿瘤细胞 DNA 片段化比率的影响 | 第30-31页 |
第4章 讨论 | 第31-38页 |
4.1 丹参酮ⅡA 对人乳腺癌细胞 MDA-MB-231 增殖的抑制作用 | 第32-33页 |
4.2 丹参酮ⅡA 对人乳腺癌细胞 MDA-MB-231 细胞凋亡的影响 | 第33-35页 |
4.3 乳腺癌生物学的特征及与 VEGF 的关系 | 第35-38页 |
第5章 结论与展望 | 第38-39页 |
5.1 结论 | 第38页 |
5.2 展望 | 第38-39页 |
致谢 | 第39-40页 |
参考文献 | 第40-44页 |
附图 | 第44-46页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第46-47页 |
综述(一) | 第47-54页 |
参考文献 | 第51-54页 |
综述(二) | 第54-60页 |
参考文献 | 第59-60页 |