| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第1章 绪论 | 第14-36页 |
| 1.1 沼气的产生过程及控制条件 | 第14-17页 |
| 1.1.1 沼气的生成过程 | 第14-15页 |
| 1.1.2 沼气生产的控制条件 | 第15-17页 |
| 1.2 开发沼气脱硫技术的重要意义 | 第17-18页 |
| 1.3 国内外去除H2S的研究现状 | 第18-33页 |
| 1.3.1 干法脱硫 | 第18-20页 |
| 1.3.2 碱法脱硫 | 第20-23页 |
| 1.3.3 液相催化氧化法脱硫 | 第23-29页 |
| 1.3.4 生物脱硫 | 第29-33页 |
| 1.4 研究目的、意义及主要研究内容 | 第33-36页 |
| 1.4.1 研究目的和意义 | 第33-34页 |
| 1.4.2 主要研究内容 | 第34-36页 |
| 第2章 单质硫测定方法的研究 | 第36-46页 |
| 2.1 单质硫测定测定方法的研究意义 | 第36页 |
| 2.2 单质硫测定方法的概述 | 第36-37页 |
| 2.3 液液萃取与GC-MS联用测定单质硫方法的研究 | 第37-43页 |
| 2.3.1 实验方法 | 第38-39页 |
| 2.3.2 萃取溶剂的优化 | 第39页 |
| 2.3.3 色谱柱选择及炉温升温条件的优化 | 第39-42页 |
| 2.3.4 GC-MS对硫标准溶液的分析 | 第42页 |
| 2.3.5 液液萃取与GC-MS对模拟样品中单质硫分析 | 第42-43页 |
| 2.3.6 单质硫分析方法的精密度及检出限 | 第43页 |
| 2.3.7 实际环境样品中单质硫测定 | 第43页 |
| 2.4 本章小结 | 第43-46页 |
| 第3章 硫化物生物氧化成单质硫影响因素研究 | 第46-64页 |
| 3.1 概述 | 第46-48页 |
| 3.1.1 生物氧化工艺选择 | 第46-47页 |
| 3.1.2 选择生物接触氧化工艺中的填料 | 第47-48页 |
| 3.2 实验材料、装置及方法 | 第48-51页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第48-49页 |
| 3.2.2 实验装置 | 第49-50页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第50页 |
| 3.2.4 分析项目及分析方法 | 第50-51页 |
| 3.3 反应器中脱硫菌种的驯化与填料挂膜 | 第51-52页 |
| 3.3.1 脱硫菌种的驯化 | 第51页 |
| 3.3.2 生物反应器中填料的挂膜 | 第51-52页 |
| 3.4 运行条件优化实验 | 第52-53页 |
| 3.4.1 PH对生物脱硫效果的影响 | 第52页 |
| 3.4.2 DO对生物脱硫效果的影响 | 第52页 |
| 3.4.3 生物反应器中水力停留时间对生物脱硫效果的影响 | 第52-53页 |
| 3.4.4 温度对生物脱硫效果的影响研究 | 第53页 |
| 3.4.5 盐度对生物脱硫的影响研究 | 第53页 |
| 3.4.6 填料类型对脱硫效果的影响研究 | 第53页 |
| 3.5 结果和讨论 | 第53-59页 |
| 3.5.1 PH对生物脱硫的影响 | 第53-54页 |
| 3.5.2 DO和容积负荷对生物脱硫效果的影响 | 第54-57页 |
| 3.5.3 水力停留时间对生物脱硫效果的影响 | 第57页 |
| 3.5.4 温度对生物脱硫的影响 | 第57-58页 |
| 3.5.5 盐度对脱硫效果的影响 | 第58-59页 |
| 3.5.6 组合填料脱硫负荷的实验结果 | 第59页 |
| 3.6 混凝处理对生产单质硫去除效果 | 第59-62页 |
| 3.7 本章小结 | 第62-64页 |
| 第4章 PCR-DGGE 分析高盐生物脱硫的优势菌种 | 第64-78页 |
| 4.1 开展 PCR-DGGE 方法进行分析优势菌种的背景 | 第64页 |
| 4.2 PCR-DGGE技术概述 | 第64-68页 |
| 4.2.1 基因组DNA提取 | 第64-65页 |
| 4.2.2 PCR技术 | 第65-67页 |
| 4.2.3 DGGE技术 | 第67-68页 |
| 4.3 实验准备及实验方法 | 第68-72页 |
| 4.3.1 实验采用的试剂 | 第68-69页 |
| 4.3.2 实验仪器 | 第69页 |
| 4.3.3 实验方法 | 第69-72页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第72-76页 |
| 4.4.1 反应器运行情况 | 第72页 |
| 4.4.2 基因组DNA和PCR扩增产物的琼脂糖凝胶电泳 | 第72-74页 |
| 4.4.3 PCR产物梯度凝胶电泳分析 | 第74-75页 |
| 4.4.4 凝胶回收产物测序 | 第75-76页 |
| 4.5 本章小结 | 第76-78页 |
| 第5章 16S r DNA克隆文库分析高含盐生物脱硫系统细菌多样性 | 第78-86页 |
| 5.1 开展 16S r DNA克隆技术进行菌种鉴定的背景 | 第78页 |
| 5.2 16S r DNA克隆技术概述 | 第78-80页 |
| 5.3 实验材料与方法 | 第80-81页 |
| 5.3.1 实验试剂 | 第80页 |
| 5.3.2 实验仪器装置 | 第80页 |
| 5.3.3 实验方法 | 第80-81页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第81-84页 |
| 5.4.1 DNA和PCR产物电泳检测 | 第81-83页 |
| 5.4.2 16S RDNA克隆文库系统发育分析 | 第83-84页 |
| 5.5 本章小结 | 第84-86页 |
| 第6章 留民营沼气生物脱硫中试研究 | 第86-98页 |
| 6.1 气体生物净化技术概述 | 第86-89页 |
| 6.1.1 生物滤池 | 第86-87页 |
| 6.1.2 生物滴滤池 | 第87-88页 |
| 6.1.3 生物洗涤塔 | 第88页 |
| 6.1.4 膜生物反应器 | 第88-89页 |
| 6.2 沼气生物脱硫工艺流程及原理 | 第89-91页 |
| 6.3 实验材料、设备和方法 | 第91-92页 |
| 6.3.1 实验材料 | 第91页 |
| 6.3.2 实验设备 | 第91-92页 |
| 6.3.3 实验方法 | 第92页 |
| 6.4 实验结果与讨论 | 第92-96页 |
| 6.4.1 吸收塔填料类型和气液比对脱硫效率的影响 | 第93-94页 |
| 6.4.2 吸收液PH对H2S去除效果的影响 | 第94页 |
| 6.4.3 吸收液温度对H2S去除效果的影响 | 第94-95页 |
| 6.4.4 溶解氧对硫化物氧化产物的影响 | 第95-96页 |
| 6.5 本章小结 | 第96-98页 |
| 第7章 留民营沼气生物脱硫示范工程的研究 | 第98-108页 |
| 7.1 留民营沼气工程概述 | 第98页 |
| 7.2 沼气生物脱硫工艺流程 | 第98-101页 |
| 7.3 沼气生物脱硫示范工程装置 | 第101-104页 |
| 7.3.1 吸收塔的结构 | 第101-102页 |
| 7.3.2 生物反应器的结构 | 第102-103页 |
| 7.3.3 沉降槽的结构 | 第103-104页 |
| 7.3.4 贫液槽、清水槽、溶配槽的结构 | 第104页 |
| 7.4 留民营沼气生物脱硫示范工程的启动和优化运行 | 第104-106页 |
| 7.4.1 沼气生物脱硫示范工程的启动 | 第105页 |
| 7.4.2 沼气生物脱硫示范工程运行参数的优化 | 第105-106页 |
| 7.5 留民营沼气生物脱硫示范工程入选北京市节能低碳技术 | 第106页 |
| 7.6 本章小结 | 第106-108页 |
| 第8章 沼气生物脱硫技术在高碑店现场中试研究 | 第108-118页 |
| 8.0 高碑店现场中试研究背景 | 第108页 |
| 8.1 高碑店污水处理厂沼气脱硫概况 | 第108-109页 |
| 8.2 高碑店现场中试概述 | 第109-110页 |
| 8.3 高碑店沼气生物脱硫中试研究 | 第110-113页 |
| 8.3.1 填料的挂膜 | 第111页 |
| 8.3.2 工艺参数的研究 | 第111-113页 |
| 8.4 PCR-DGGE技术对高脾店沼气生物脱硫系统菌种鉴定 | 第113-117页 |
| 8.4.1 实验方法 | 第113-115页 |
| 8.4.2 结果与讨论 | 第115-117页 |
| 8.5 本章小结 | 第117-118页 |
| 第9章 结论与建议 | 第118-120页 |
| 9.1 结论 | 第118-119页 |
| 9.2 创新点 | 第119页 |
| 9.3 建议 | 第119-120页 |
| 致谢 | 第120-122页 |
| 参考文献 | 第122-132页 |
| 攻读博士学位期间研究成果及科研究项目 | 第132-134页 |
| 附录：生物脱硫技术入选北京市节能低碳技术 | 第134页 |
