| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 英文缩略词 | 第12-18页 |
| 第1章 绪论 | 第18-33页 |
| 1.1 引言 | 第18页 |
| 1.2 小麦条锈病 | 第18-26页 |
| 1.2.1 小麦条锈病在世界各地发生情况 | 第18-20页 |
| 1.2.2 小麦条锈菌转主寄主的发现与生活史 | 第20-22页 |
| 1.2.3 小麦条锈菌生物学特性 | 第22-23页 |
| 1.2.4 小麦条锈菌染色体及基因组 | 第23-24页 |
| 1.2.5 病害循环 | 第24-25页 |
| 1.2.6 小麦条锈病的防治 | 第25-26页 |
| 1.3 小麦条锈菌毒性变异途径 | 第26页 |
| 1.4 小麦条锈菌生理小种及鉴别 | 第26-28页 |
| 1.5 小麦条锈菌毒性/无毒性基因的研究进展 | 第28-30页 |
| 1.6 小麦条锈菌交配型基因研究进展 | 第30-31页 |
| 1.7 选题的目的意义 | 第31-33页 |
| 第2章 小麦条锈菌毒性基因连锁图谱的构建 | 第33-56页 |
| 2.1 引言 | 第33页 |
| 2.2 材料与方法 | 第33-43页 |
| 2.2.1 小麦条锈菌冬孢子的产生 | 第33-34页 |
| 2.2.2 小麦条锈菌自交群体的建立 | 第34-36页 |
| 2.2.3 小麦条锈菌自交群体个体毒性鉴定 | 第36页 |
| 2.2.4 DNA的提取和检测 | 第36-38页 |
| 2.2.5 SSR标记分析 | 第38-39页 |
| 2.2.6 SNP标记分析 | 第39-41页 |
| 2.2.7 GBS测序分析 | 第41-42页 |
| 2.2.8 数据分析 | 第42-43页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第43-54页 |
| 2.3.1 毒性测定分析 | 第43-45页 |
| 2.3.2 群体分析 | 第45页 |
| 2.3.3 遗传连锁图的构建 | 第45-50页 |
| 2.3.4 分析讨论 | 第50-54页 |
| 2.4 本章小结 | 第54-56页 |
| 第3章 基于交配型基因SNP位点对小麦条锈菌群体结构分析 | 第56-71页 |
| 3.1 引言 | 第56-57页 |
| 3.2 材料与方法 | 第57-61页 |
| 3.2.1 世界各地小麦条锈菌小种的收集 | 第57-58页 |
| 3.2.2 小麦条锈菌不同生长阶段材料的收集 | 第58页 |
| 3.2.3 毒性测定 | 第58页 |
| 3.2.4 SNP引物的设计 | 第58页 |
| 3.2.5 RNA的提取及cDNA的合成 | 第58-59页 |
| 3.2.6 DNA的提取,纯化和检测 | 第59-60页 |
| 3.2.7 交配型基因表达引物的设计 | 第60页 |
| 3.2.8 荧光实时定量PCR (Q-PCR)检测 | 第60-61页 |
| 3.2.9 SNP标记分析 | 第61页 |
| 3.2.10 数据分析 | 第61页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第61-70页 |
| 3.3.1 小种间遗传关系的聚类分析 | 第61-65页 |
| 3.3.2 遗传多样性水平分析 | 第65-67页 |
| 3.3.3 基因流动分析 | 第67页 |
| 3.3.4 毒性与交配型基因关性分析 | 第67页 |
| 3.3.5 交配型基因在小麦条锈菌不同阶段表达分析 | 第67-68页 |
| 3.3.6 讨论 | 第68-70页 |
| 3.4 本章小结 | 第70-71页 |
| 结论 | 第71-74页 |
| 参考文献 | 第74-87页 |
| 附录A | 第87-138页 |
| 附录B: 拟南芥CKB1基因参与ABA,GA信号通路调节的研究 | 第138-168页 |
| B.1 材料与方法 | 第138-152页 |
| B.1.1 实验材料 | 第138-140页 |
| B.1.1.1 植物材料 | 第138-139页 |
| B.1.1.2 菌株和质粒 | 第139页 |
| B.1.1.3 酶和试剂 | 第139页 |
| B.1.1.4 实验溶液配置 | 第139-140页 |
| B.1.2 实验方法 | 第140-152页 |
| B.1.2.1 拟南芥生长条件 | 第140页 |
| B.1.2.2 种子灭菌与播种 | 第140页 |
| B.1.2.3 总DNA提取 | 第140-141页 |
| B.1.2.4 质粒DNA的提取 | 第141-142页 |
| B.1.2.5 PCR产物回收 | 第142页 |
| B.1.2.6 插入突变体纯合子的鉴定 | 第142-143页 |
| B.1.2.7 大肠杆菌感受态细胞及农杆菌感受态细胞制备 | 第143-144页 |
| B.1.2.8 过表达载体与GUS表达载体的构建 | 第144-146页 |
| B.1.2.9 转基因植物的转化及筛选 | 第146-147页 |
| B.1.2.10 植物总RNA提取及cDNA的合成 | 第147-148页 |
| B.1.2.11 胁迫处理野生型拟南芥 | 第148页 |
| B.1.2.12 种子萌发率,根长及下胚轴的测定 | 第148-150页 |
| B.1.2.13 气孔观察与气孔孔径大小的测定 | 第150页 |
| B.1.2.14 失水速率的测定 | 第150页 |
| B.1.2.15 脯氨酸含量的测定 | 第150-151页 |
| B.1.2.16 GUS活性组化染色 | 第151页 |
| B.1.2.17 实时荧光定量PCR(Q-PCR)检测 | 第151-152页 |
| B.2 实验结果 | 第152-162页 |
| B.2.1 插入突变体纯合子及过表达纯合子的鉴定 | 第152页 |
| B.2.2 CKB1基因受不同胁迫处理调控 | 第152页 |
| B.2.3 CKB1基因GUS染色及组织表达分析 | 第152-154页 |
| B.2.4 CKB1基因参与ABA和GA调控种子萌发 | 第154-155页 |
| B.2.5 CKB1基因参与ABA,GA调控根长及下胚轴长度 | 第155-157页 |
| B.2.6 CKB1基因参与ABA调控气孔开放,失水率及脯氨酸含量 | 第157-159页 |
| B.2.7 ABA信号通路相关基因基因在CKB1的表达 | 第159页 |
| B.2.8 GA合成及代谢途径中基因在CKB1的表达 | 第159-162页 |
| B.3 讨论 | 第162-163页 |
| 参考文献 | 第163-168页 |
| 附录C (攻读博士学位期间所发表的学术论文目录) | 第168-169页 |
| 致谢 | 第169-170页 |
