| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 符号表 | 第7-11页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-19页 |
| 1.1 鸭坦布苏病毒病研究进展 | 第11-13页 |
| 1.1.1 鸭坦布苏病毒生物学特征 | 第11-12页 |
| 1.1.2 鸭坦布苏病毒病的流行病学 | 第12页 |
| 1.1.3 鸭坦布苏病毒病的临床症状与病理变化 | 第12-13页 |
| 1.2 Tα1 的研究进展 | 第13-14页 |
| 1.2.1 Tα1（Thymopentin α1）的发现 | 第13页 |
| 1.2.2 Tα1（Thymopentin α1）的生物学作用 | 第13-14页 |
| 1.2.3 Tα1（Thymopentin α1）的临床应用 | 第14页 |
| 1.3 BP5的研究进展 | 第14-17页 |
| 1.3.1 BP5的发现 | 第14-15页 |
| 1.3.2 BP5的生物学功能 | 第15-16页 |
| 1.3.3 法氏囊活性肽未来的临床应用方向 | 第16-17页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第17-19页 |
| 第2章 DTMUV HN1株囊膜E蛋白抑制肽的筛选及鉴定 | 第19-29页 |
| 2.1 材料 | 第20页 |
| 2.2 方法 | 第20-22页 |
| 2.2.1 噬菌体12肽库的亲和筛选 | 第20页 |
| 2.2.2 噬菌体阳性克隆的ELISA鉴定 | 第20-21页 |
| 2.2.3 噬菌体阳性克隆抑制试验 | 第21页 |
| 2.2.4 阳性噬菌体克隆的DNA序列测定与抑制肽合成 | 第21页 |
| 2.2.5 抑制肽对鸭胚成纤维细胞增值的影响 | 第21-22页 |
| 2.2.6 抑制肽对DTMUV HN1株在鸭胚成纤维细胞中增值的影响 | 第22页 |
| 2.3 结果 | 第22-27页 |
| 2.3.1 噬菌体12肽库筛选及富集率 | 第22-23页 |
| 2.3.2 噬菌体阳性克隆的ELISA鉴定 | 第23-24页 |
| 2.3.3 噬菌体阳性克隆的竞争抑制试验 | 第24页 |
| 2.3.4 噬菌体阳性克隆DNA序列测定及P3-12、P8-12 的合成 | 第24页 |
| 2.3.5 抑制肽P3-12、P8-12 对鸭胚成纤维细胞增殖的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.6 抑制肽P3-12、P8-12 对DTMUV HN1株在鸭胚成纤维细胞中增值的影响 | 第25-27页 |
| 2.4 讨论 | 第27页 |
| 2.4.1 抑制肽的筛选与鸭胚成纤维细胞的建立 | 第27页 |
| 2.4.2 抑制肽的效果分析 | 第27页 |
| 2.5 小结 | 第27-29页 |
| 第3章 rTα1-BP5的构建表达及其佐剂特性检测 | 第29-39页 |
| 3.1 材料 | 第30页 |
| 3.1.1 质粒、菌株、病毒株及实验动物 | 第30页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第30页 |
| 3.2 方法 | 第30-33页 |
| 3.2.1 rTα1-BP5工程菌的构建 | 第30-31页 |
| 3.2.2 rTα1-BP5的表达 | 第31-32页 |
| 3.2.3 rTα1-BP5体外活性测定 | 第32页 |
| 3.2.4 动物分组及免疫 | 第32页 |
| 3.2.5 血清中HI抗体效价的测定 | 第32页 |
| 3.2.6 血清中抗体亚型IgG1、Ig G2a效价的测定 | 第32页 |
| 3.2.7 血清中IL-4 和IFN-γ 的测定 | 第32页 |
| 3.2.8 小鼠的攻毒保护试验 | 第32-33页 |
| 3.3 结果 | 第33-37页 |
| 3.3.1 rTα1-BP5基因的扩增及原核表达 | 第33-34页 |
| 3.3.2 rTα1-BP5的体外活性 | 第34页 |
| 3.3.3 免疫小鼠血清中的HI抗体效价 | 第34-35页 |
| 3.3.4 血清中IgG抗体亚型及其效价 | 第35-36页 |
| 3.3.5 免疫小鼠血清中IL-4 和IFN-γ | 第36页 |
| 3.3.6 小鼠的攻毒保护试验 | 第36-37页 |
| 3.4 讨论 | 第37-38页 |
| 3.4.1 重组融合肽的构建 | 第37-38页 |
| 3.4.2 rTα1-BP5的免疫增强佐剂特性初步分析 | 第38页 |
| 3.5 小结 | 第38-39页 |
| 第4章 rTα1-BP5对鸭坦布苏病毒灭活疫苗的免疫增强作用 | 第39-49页 |
| 4.1 材料 | 第39-40页 |
| 4.1.1 毒株、疫苗及实验动物 | 第39页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第39-40页 |
| 4.2 方法 | 第40-41页 |
| 4.2.1 动物分组与免疫 | 第40页 |
| 4.2.2 间接ELISA法测定血清IgG抗体水平 | 第40页 |
| 4.2.3 血清中细胞因子的测定 | 第40-41页 |
| 4.2.4 淋巴细胞增殖测定 | 第41页 |
| 4.2.5 病毒中和滴度测定 | 第41页 |
| 4.2.6 动物攻毒试验 | 第41页 |
| 4.3 结果 | 第41-45页 |
| 4.3.1 血清IgG抗体水平 | 第41-42页 |
| 4.3.2 血清细胞因子水平 | 第42页 |
| 4.3.3 淋巴细胞增殖 | 第42-43页 |
| 4.3.4 病毒中和试验 | 第43页 |
| 4.3.5 免疫鸭的攻毒保护试验 | 第43-45页 |
| 4.4 讨论 | 第45-47页 |
| 4.4.1 免疫鸭各项指标的测定分析 | 第45-46页 |
| 4.4.2 动物攻毒保护试验结果分析 | 第46-47页 |
| 4.5 小结 | 第47-49页 |
| 第5章 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第54页 |
