| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-19页 |
| 1.1 桦褐孔菌的概述 | 第10-15页 |
| 1.1.1 桦褐孔菌的简介 | 第10页 |
| 1.1.2 桦褐孔菌的生物学特性及资源分布 | 第10-11页 |
| 1.1.3 桦褐孔菌的化学成分 | 第11-13页 |
| 1.1.4 桦褐孔菌的药理作用 | 第13-14页 |
| 1.1.5 桦褐孔菌的研究现状 | 第14-15页 |
| 1.2 桦褐孔菌的液体深层发酵培养 | 第15-17页 |
| 1.2.1 液体发酵培养的工艺流程 | 第15页 |
| 1.2.2 液体发酵培养的目标产物 | 第15-16页 |
| 1.2.3 液体发酵培养的方式 | 第16页 |
| 1.2.4 液体发酵培养的特点 | 第16-17页 |
| 1.3 桦褐孔菌三萜类化合物的提取方法 | 第17页 |
| 1.3.1 超声提取法 | 第17页 |
| 1.3.2 溶剂浸提法 | 第17页 |
| 1.3.3 微波提取法 | 第17页 |
| 1.4 主要研究的内容与意义 | 第17-19页 |
| 1.4.1 主要研究的内容 | 第17-18页 |
| 1.4.2 主要研究的意义 | 第18-19页 |
| 第二章 材料与方法 | 第19-28页 |
| 2.1 材料及培养基 | 第19页 |
| 2.1.1 材料 | 第19页 |
| 2.1.2 培养基 | 第19页 |
| 2.2 仪器及药品 | 第19-21页 |
| 2.2.1 仪器 | 第19-20页 |
| 2.2.2 药品 | 第20-21页 |
| 2.3 方法 | 第21-23页 |
| 2.3.1 菌种活化 | 第21页 |
| 2.3.2 桦褐孔菌形态观察 | 第21页 |
| 2.3.3 桦褐孔菌的发酵培养 | 第21页 |
| 2.3.4 发酵液的处理 | 第21页 |
| 2.3.5 桦褐孔菌胞外多糖含量的测定 | 第21-22页 |
| 2.3.6 桦褐孔菌胞外多糖抗氧化活性的测定方法 | 第22-23页 |
| 2.4 桦褐孔菌三萜的提取与条件优化 | 第23-26页 |
| 2.4.1 标准曲线的绘制 | 第23-24页 |
| 2.4.2 桦褐孔菌三萜含量测定公式 | 第24-25页 |
| 2.4.3 桦褐孔菌三萜超声提取条件优化的单因素实验 | 第25页 |
| 2.4.4 桦褐孔菌三萜超声提取条件优化的多因素实验 | 第25-26页 |
| 2.5 桦褐孔菌的发酵培养基优化 | 第26-28页 |
| 2.5.1 不同碳源对桦褐孔菌菌体生物量、三萜和胞外多糖产量的影响 | 第26页 |
| 2.5.2 不同氮源对桦褐孔菌菌体生物量、三萜和胞外多糖产量的影响 | 第26-27页 |
| 2.5.3 不同磷酸二氢钾的添加量对桦褐孔菌菌体生物量、三萜和胞外多糖产量的影响 | 第27-28页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第28-46页 |
| 3.1 桦褐孔菌的液体培养 | 第28-29页 |
| 3.1.1 桦褐孔菌的活化培养与菌落形态 | 第28页 |
| 3.1.2 桦褐孔菌的液体发酵 | 第28-29页 |
| 3.2 桦褐孔菌发酵产多糖含量的测定结果 | 第29页 |
| 3.3 桦褐孔菌多糖抗氧化活性的测定 | 第29-32页 |
| 3.3.1 普鲁士蓝法测定桦褐孔菌胞外多糖的总还原力 | 第29-30页 |
| 3.3.2 邻苯三酚自氧化法测定多糖对超氧阴离子的清除作用 | 第30-31页 |
| 3.3.3 胞外多糖对羟基自由基的清除作用 | 第31-32页 |
| 3.4 超声提取桦褐孔菌中三萜类化合物的单因素试验 | 第32-35页 |
| 3.4.1 料液比对桦褐孔菌发酵液中三萜提取率的影响 | 第32-33页 |
| 3.4.2 超声时间对桦褐孔菌发酵液中三萜提取率的影响 | 第33-34页 |
| 3.4.3 超声温度对桦褐孔菌发酵液中三萜提取率的影响 | 第34-35页 |
| 3.5 桦褐孔菌发酵液三萜提取的正交试验 | 第35-36页 |
| 3.6 桦褐孔菌发酵液三萜提取率的响应面设计试验 | 第36-41页 |
| 3.7 桦褐孔菌发酵培养基优化分析 | 第41-46页 |
| 3.7.1 不同碳源对桦褐孔菌菌体生物量、三萜和胞外多糖含量的影响 | 第41-42页 |
| 3.7.2 不同氮源对桦褐孔菌菌体生物量、三萜和胞外多糖含量的影响 | 第42-44页 |
| 3.7.3 不同磷酸二氢钾的添加量对桦褐孔菌菌体生物量、三萜和胞外多糖含量的影响 | 第44-46页 |
| 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-49页 |
| 致谢 | 第49页 |
