| 摘要 | 第9-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-29页 |
| 1 PRRSV和PCV2感染流行现状 | 第11-18页 |
| 1.1 PRRSV感染流行现状 | 第11-15页 |
| 1.2 PCV2感染流行现状 | 第15-16页 |
| 1.3 PRRSV/PCV2共感染流行现状 | 第16-18页 |
| 2 PRRSV和PCV2防制方法研究进展 | 第18-19页 |
| 2.1 疫苗预防 | 第18页 |
| 2.2 中药提取物或天然化合物 | 第18-19页 |
| 2.3 其他 | 第19页 |
| 3 中药在新药研发过程中的应用 | 第19-21页 |
| 3.1 抗病毒兽药的使用现状 | 第19-20页 |
| 3.2 天然产物：药物研发的宝库 | 第20页 |
| 3.3 苦参碱的药理作用 | 第20-21页 |
| 4 本研究的目的和意义 | 第21-22页 |
| 参考文献 | 第22-29页 |
| 第二章 苦参碱对PRRSV和PCV2单独感染的影响 | 第29-38页 |
| 1 材料与方法 | 第30-32页 |
| 1.1 材料 | 第30页 |
| 1.2 方法 | 第30-32页 |
| 2 结果 | 第32-34页 |
| 2.1 苦参碱对PRRSV的直接杀灭作用 | 第32页 |
| 2.2 苦参碱对PRRSV在Marc-145细胞上复制的影响 | 第32-34页 |
| 3 分析与讨论 | 第34-35页 |
| 3.1 苦参碱抑制PRRSV N蛋白的表达 | 第34页 |
| 3.2 苦参碱可抑制PRRSV和PCV2的单独感染 | 第34-35页 |
| 4 小结 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-38页 |
| 第三章 PRRSV/PCV2共感染PAM细胞模型的建立 | 第38-53页 |
| 1 材料与方法 | 第38-43页 |
| 1.1 材料 | 第38-39页 |
| 1.2 方法 | 第39-43页 |
| 2 结果 | 第43-48页 |
| 2.1 PRRSV在PAM细胞上毒力测定结果 | 第43页 |
| 2.2 PCV2在PAM细胞上毒力测定结果 | 第43-44页 |
| 2.3 感染后不同时间点PRRSV在单独感染和PRRSV/PCV2混合感染PAM细胞上增殖情况 | 第44-45页 |
| 2.4 感染后不同时间点PCV2在单独感染和PRRSV/PCV2混合感染PAM细胞上增殖情况 | 第45-47页 |
| 2.5 PRRSV/PCV2混合感染对PRRSV在PAM细胞上增殖的影响 | 第47-48页 |
| 2.6 PRRSV/PCV2混合感染对PCV2在PAM细胞上增殖的影响 | 第48页 |
| 3 分析与讨论 | 第48-50页 |
| 3.1 PRRSV在PAM细胞上的增殖规律 | 第48-49页 |
| 3.2 PCV2在PAM细胞上的增殖规律 | 第49页 |
| 3.3 PRRSV/PCV2共感染促进PRRSV和PCV2的增殖 | 第49-50页 |
| 4 小结 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-53页 |
| 第四章 苦参碱对PRRSV/PCV2共感染PAM细胞的影响 | 第53-77页 |
| 1 材料与方法 | 第54-63页 |
| 1.1 材料 | 第54-55页 |
| 1.2 方法 | 第55-63页 |
| 2 结果 | 第63-70页 |
| 2.1 HPLC法测苦参碱含量 | 第63页 |
| 2.2 苦参碱在PAM细胞上细胞毒性结果 | 第63-65页 |
| 2.3 苦参碱对PRRSV N基因/蛋白表达的影响 | 第65-66页 |
| 2.4 苦参碱对PCV2 CAP基因表达的影响 | 第66-67页 |
| 2.5 苦参碱对病毒诱导TLR3和TLR4基因表达的影响 | 第67-68页 |
| 2.6 苦参碱对病毒诱导的TNF-α表达的影响 | 第68-69页 |
| 2.7 苦参碱对NF-кB通路活化的影响 | 第69-70页 |
| 3 分析与讨论 | 第70-73页 |
| 3.1 苦参碱对PAM细胞的细胞毒性 | 第70-71页 |
| 3.2 苦参碱抑制PRRSV/PCV2对PAM细胞的感染 | 第71页 |
| 3.3 苦参碱对病毒诱导的TLR3,4/NF-κB/TNF-α通路的影响 | 第71-73页 |
| 4 小结 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-77页 |
| 第五章 PRRSV/PCV2共感染昆明小鼠模型建立 | 第77-87页 |
| 1 材料与方法 | 第77-81页 |
| 1.1 材料 | 第77-78页 |
| 1.2 方法 | 第78-81页 |
| 2 结果 | 第81-84页 |
| 2.1 PCR检测PRRSV、PCV2在PRRSV/PCV2共感染小鼠各组织中的表达 | 第81-82页 |
| 2.2 qPCR比较各组织中PCV2在PRRSV/PCV2共感染和PCV2单独感染模型中的表达量 | 第82-83页 |
| 2.3 PRRSV/PCV2共感染和PCV2单独感染昆明小鼠引起的肺脏病变 | 第83-84页 |
| 3 分析与讨论 | 第84-85页 |
| 3.1 PRRSV/PCV2共感染昆明小鼠模型确立 | 第84页 |
| 3.2 PCV2感染昆明小鼠时具有嗜组织性,病毒载量在肝脏中含量最高 | 第84-85页 |
| 3.3 PRRSV感染能促进PCV2在小鼠体内的复制,并诱发更为严重的肺脏病理变化 | 第85页 |
| 4 小结 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-87页 |
| 第六章 苦参碱抗PRRSV/PCV2共感染昆明小鼠的研究 | 第87-104页 |
| 1 材料与方法 | 第87-91页 |
| 1.1 材料 | 第87-88页 |
| 1.2 方法 | 第88-91页 |
| 2 结果 | 第91-99页 |
| 2.1 苦参碱急性毒性试验结果 | 第91-93页 |
| 2.2 苦参碱对小鼠体增重、脾指数和胸腺指数的影响 | 第93-94页 |
| 2.3 苦参碱对病毒诱发的肺脏病理变化的影响 | 第94页 |
| 2.4 苦参碱对肝脏中PCV2复制的影响 | 第94-97页 |
| 2.5 苦参碱对小鼠腹腔巨噬细胞吞噬功能的影响 | 第97-98页 |
| 2.6 苦参碱对脾淋巴细胞增殖的影响 | 第98-99页 |
| 3 分析与讨论 | 第99-101页 |
| 3.1 病毒持续感染对昆明小鼠的影响 | 第99-100页 |
| 3.2 苦参碱使用剂量确定 | 第100页 |
| 3.3 苦参碱抑制PCV2在小鼠体内的复制 | 第100-101页 |
| 3.4 苦参碱可干扰病毒诱导的病理变化 | 第101页 |
| 4 小结 | 第101-102页 |
| 参考文献 | 第102-104页 |
| 结论 | 第104-105页 |
| 创新点 | 第105-107页 |
| Abstract | 第107-109页 |
| 中英文缩写对照表 | 第111-113页 |
| 附录 | 第113-115页 |
| 致谢 | 第115-187页 |
