| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 前言 | 第9-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-26页 |
| ·植物盐胁迫概述 | 第11-13页 |
| ·盐胁迫对植物的危害 | 第11页 |
| ·植物耐盐性的生理基础 | 第11-12页 |
| ·番茄耐盐性研究进展 | 第12-13页 |
| ·miRNA研究概述 | 第13-16页 |
| ·miRNA的发现 | 第13-14页 |
| ·植物miRNA的生物合成 | 第14页 |
| ·植物miRNA的特点 | 第14-15页 |
| ·植物miRNA的基本特点 | 第14-15页 |
| ·植物miRNA与动物的差异 | 第15页 |
| ·植物miRNA的作用机理 | 第15-16页 |
| ·植物miRNA的功能 | 第16-19页 |
| ·植物miRNA与植物生长发育 | 第16-17页 |
| ·植物miRNA与植物抗逆 | 第17-19页 |
| ·植物miRNA与生物胁迫 | 第17页 |
| ·植物miRNA与非生物胁迫 | 第17-19页 |
| ·植物miRNA与植物激素信号转导 | 第19页 |
| ·植物miRNA的研究方法 | 第19-24页 |
| ·miRNA的发现、分离及克隆 | 第19-20页 |
| ·miRNA的表达分析 | 第20-23页 |
| ·real-time PCR分析 | 第20-21页 |
| ·基因芯片分析 | 第21-22页 |
| ·原位杂交分析 | 第22页 |
| ·Northern blot分析 | 第22页 |
| ·深度测序分析 | 第22-23页 |
| ·mi RNA的靶基因预测、鉴定 | 第23-24页 |
| ·mi RNA的功能分析 | 第24页 |
| ·miRNA398的研究进展 | 第24-26页 |
| 2 材料与方法 | 第26-36页 |
| ·试验材料 | 第26-27页 |
| ·植物材料 | 第26页 |
| ·细菌菌株和载体 | 第26页 |
| ·主要仪器设备 | 第26-27页 |
| ·试验方法 | 第27-36页 |
| ·sly-miR398的预测 | 第27页 |
| ·sly-miR398的进化分析 | 第27页 |
| ·sly-miR398及其靶基因组织表达特异性分析 | 第27-30页 |
| ·番茄材料的处理 | 第27-28页 |
| ·各组织总RNA提取 | 第28页 |
| ·sly-miR398靶基因的预测 | 第28页 |
| ·sly-miR398和靶基因CSD的qPCR | 第28-30页 |
| ·sly-MIR398过表达载体的构建 | 第30-34页 |
| ·番茄基因组DNA的提取 | 第30页 |
| ·sly-MIR398过表达片段的克隆 | 第30-32页 |
| ·sly-MIR398过表达片段转化大肠杆菌 | 第32页 |
| ·sly-MIR398过表达载体转化农杆菌 | 第32-33页 |
| ·sly-MIR398过表达载体对番茄的遗传转化 | 第33-34页 |
| ·sly-MIR398a/b过表达转基因植株GUS组织化学染色检测 | 第34页 |
| ·sly-MIR398a启动子分析 | 第34页 |
| ·sly-MIR398a启动子表达载体的构建 | 第34-35页 |
| ·sly-miR398及其靶基因对NaCl、GA、SA的响应 | 第35-36页 |
| ·植物材料的处理 | 第35页 |
| ·NaCl、GA、SA处理下的sly-miR398及其靶基因的qPCR反应 | 第35页 |
| ·NaCl处理对生物量的影响 | 第35-36页 |
| 3 结果与分析 | 第36-50页 |
| ·番茄miR398成员的预测 | 第36页 |
| ·miR398家族的系统进化树构建 | 第36-37页 |
| ·sly-miR398及其靶基因组织特异性表达 | 第37-39页 |
| ·预测到的sly-miR398的靶基因 | 第37页 |
| ·提取的番茄RNA | 第37-38页 |
| ·sly-miR398及CSD的组织特异性表达情况 | 第38-39页 |
| ·sly-MIR398过表达载体构建 | 第39-40页 |
| ·克隆到的sly-MIR398a/b过表达片段 | 第39页 |
| ·sly-MIR398a/b过表达片段成功转入大肠杆菌、农杆菌 | 第39-40页 |
| ·sly-MIR398a/b过表达载体转化番茄 | 第40-41页 |
| ·sly-MIR398a/b过表达转基因番茄叶片GUS组织化学染色检测 | 第41-42页 |
| ·sly-MIR398a启动子序列分析 | 第42-43页 |
| ·sly-MIR398a启动子表达载体构建 | 第43-44页 |
| ·克隆到的sly-MIR398a启动子片段 | 第43页 |
| ·sly-MIR398a启动子载体成功转入大肠杆菌、农杆菌 | 第43-44页 |
| ·sly-MIR398a启动子载体转化番茄 | 第44页 |
| ·sly-miR398及靶基因CSD对NaCl、GA、SA处理的响应 | 第44-49页 |
| ·NaCl对sly-mi R398及其靶基因CSD表达的影响 | 第44-46页 |
| ·NaCl处理对番茄叶片sly-miR398及CSD表达的影响 | 第44-45页 |
| ·NaCl处理对番茄茎中sly-miR398及CSD表达的影响 | 第45页 |
| ·NaCl处理对番茄根部sly-miR398及CSD表达的影响 | 第45-46页 |
| ·GA对sly-miR398及其靶基因CSD表达的影响 | 第46-47页 |
| ·GA处理对番茄叶片sly-mi R398及CSD表达的影响 | 第46页 |
| ·GA处理对番茄茎中sly-mi R398及CSD表达的影响 | 第46-47页 |
| ·GA处理对番茄根部sly-mi R398及CSD表达的影响 | 第47页 |
| ·SA对sly-miR398及其靶基因CSD表达的影响 | 第47-49页 |
| ·SA处理对番茄叶片sly-miR398及CSD表达的影响 | 第47-48页 |
| ·SA处理对番茄茎中sly-miR398及CSD表达的影响 | 第48页 |
| ·SA处理对番茄根部sly-miR398及CSD表达的影响 | 第48-49页 |
| ·各处理各部位sly-miR398及其靶基因CSD的表达情况汇总 | 第49页 |
| ·NaCl处理对番茄进行地上部和地下部生长的影响 | 第49-50页 |
| 4 讨论 | 第50-52页 |
| ·番茄miR398及其靶基因的预测、组织特异性表达 | 第50页 |
| ·番茄miR398的进化 | 第50页 |
| ·番茄miR398的转基因 | 第50-51页 |
| ·miR398与耐盐性 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-58页 |
| 个人简介 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 附录 | 第60-62页 |
