| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 縮略词 | 第9-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-23页 |
| 1 花生作为生长素运输研究材料的特殊意义 | 第15-16页 |
| 2 生长素的研究进展 | 第16-20页 |
| ·生长素的作用机理 | 第16-17页 |
| ·生长素的信号转导 | 第17-18页 |
| ·生长素的极性运输 | 第18-19页 |
| ·斜置刺激对生长素运输的影响 | 第19-20页 |
| 3 生长素特异性诱导的基因及启动子 | 第20-21页 |
| 4 生长素的测定技术 | 第21-22页 |
| 5 研究目的与意义 | 第22-23页 |
| 第二章 花生开花下针期生长素的分布 | 第23-31页 |
| 1 材料与仪器试剂 | 第23-24页 |
| ·试验材料 | 第23页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第23-24页 |
| 2 试验方法 | 第24-26页 |
| ·对照组的设置 | 第24页 |
| ·斜置刺激处理 | 第24-25页 |
| ·生长素的提取与纯化 | 第25页 |
| ·标准溶液的配制 | 第25页 |
| ·生长素的测定 | 第25-26页 |
| 3 结果与分析 | 第26-28页 |
| ·花生中IAA的LC-MS/MS测定 | 第26页 |
| ·花生开花下针期不同器官中IAA含量的差异 | 第26-27页 |
| ·斜置刺激处理后花生开花下针期不同器官中IAA的含量变化 | 第27页 |
| ·斜置刺激处理对花生开花下针期IAA含量变化的影响 | 第27-28页 |
| 4 讨论 | 第28-29页 |
| 5 本章小结 | 第29-31页 |
| 第三章 花生开花下针期赤霉素的分布 | 第31-40页 |
| 1 材料与仪器试剂 | 第31页 |
| ·试验材料 | 第31页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第31页 |
| 2 方法 | 第31-32页 |
| ·赤霉素的提取与纯化 | 第31-32页 |
| ·赤霉素测定的液相色谱-质谱法 | 第32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-37页 |
| ·花生中GA的LC-MS/MS测定 | 第32-33页 |
| ·花生开花下针期不同器官中GA_1含量的差异 | 第33页 |
| ·花生开花下针期不同器官中GA_3含量的差异 | 第33-34页 |
| ·花生开花下针期不同器官中GA_4含量的差异 | 第34页 |
| ·斜置刺激对花生开花下针期GA_1含量变化的影响 | 第34-35页 |
| ·斜置刺激对花生开花下针期GA_3含量变化的影响 | 第35-36页 |
| ·斜置刺激对花生开花下针期GA_4含量变化的影响 | 第36页 |
| ·花生不同器官中IAA与GA_1、GA_3、GA_4的相关分析 | 第36-37页 |
| 4 讨论 | 第37-38页 |
| 5 本章小结 | 第38-40页 |
| 第四章 花生开花下针期生长素运输与分布的~(14)C示踪研究 | 第40-49页 |
| 1 材料与仪器试剂 | 第40页 |
| ·试验材料 | 第40页 |
| ·供试仪器和试剂 | 第40页 |
| 2 试验方法 | 第40-42页 |
| ·最佳曝光时间的确定 | 第41页 |
| ·植株主茎顶叶的~(14)C-IAA标记 | 第41页 |
| ·果针着生部位上方茎段的~(14)C-IAA标记 | 第41页 |
| ·花生根部的~(14)C-IAA标记 | 第41-42页 |
| ·花生花器官的~(14)C-IAA标记 | 第42页 |
| 3 结果与分析 | 第42-47页 |
| ·花生放射自显影曝光时间的确定 | 第42页 |
| ·花生植株中~(14)C-IAA的运输 | 第42-45页 |
| ·花生植株中~(14)C-IAA的动态分布 | 第45-47页 |
| 4 讨论 | 第47-48页 |
| 5 本章小结 | 第48-49页 |
| 第五章 利用DR_5启动子示踪生长素的研究 | 第49-60页 |
| 1 材料与仪器试剂 | 第49-51页 |
| ·试验材料 | 第49页 |
| ·仪器与试剂 | 第49页 |
| ·培养基 | 第49-50页 |
| ·研究内容 | 第50-51页 |
| 2 试验方法 | 第51-53页 |
| ·外植体的准备 | 第51页 |
| ·农杆菌的活化与外植体的侵染 | 第51-52页 |
| ·共培养 | 第52页 |
| ·PCR检测 | 第52页 |
| ·转化植株的GFP基因检测 | 第52-53页 |
| 3 结果与分析 | 第53-57页 |
| ·花生最佳外植体的确定 | 第53页 |
| ·影响花生遗传转化因素的研究 | 第53-55页 |
| ·遗传转化植株的鉴定 | 第55-57页 |
| 4 讨论 | 第57-59页 |
| ·花生的遗传转化分析 | 第57-58页 |
| ·常见的报告基因 | 第58页 |
| ·DR_5启动子与报告基因系统的应用 | 第58-59页 |
| 5 本章小结 | 第59-60页 |
| 第六章 生长素及其运输抑制剂对开花下针期的生长素分布及生长发育的影响 | 第60-68页 |
| 1 材料与试剂 | 第60页 |
| 2 试验方法 | 第60-61页 |
| 3 结果与分析 | 第61-65页 |
| ·IAA及TIBA处理对花生不同部位中IAA含量的影响 | 第61页 |
| ·IAA及TIBA处理对主茎、侧枝及果针生长的影响 | 第61-62页 |
| ·IAA及TIBA处理对单株花朵数和果针数、下针率及平均单果重的影响 | 第62-63页 |
| ·IAA及TIBA处理对叶片光合作用参数的影响 | 第63-64页 |
| ·果针中IAA含量与果针生长的相关性分析 | 第64-65页 |
| 4 讨论 | 第65-67页 |
| 5 本章小结 | 第67-68页 |
| 第七章 花生开花下针期果针显微结构观察 | 第68-73页 |
| 1 材料与方法 | 第68-69页 |
| ·试验材料 | 第68页 |
| ·试验方法 | 第68-69页 |
| 2 结果与分析 | 第69-71页 |
| ·果针横切面的电镜观察 | 第69-70页 |
| ·果针纵切面的电镜观察 | 第70-71页 |
| 3 讨论 | 第71-72页 |
| 4 本章小结 | 第72-73页 |
| 全文总结 | 第73-76页 |
| 1 结论 | 第73-74页 |
| 2 本研究的创新点 | 第74-75页 |
| 3 进一步工作设想 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-90页 |
| 附图 | 第90-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 作者简历 | 第92-93页 |
