| 摘要 | 第1-13页 |
| Abstract | 第13-18页 |
| 实验一 微流控芯片的设计、制作及芯片上 PC12 细胞的培养 | 第18-32页 |
| 前言 | 第18-19页 |
| 材料与方法 | 第19-22页 |
| 1. 材料 | 第19-20页 |
| ·细胞株 | 第19页 |
| ·主要仪器与设备 | 第19页 |
| ·主要试剂 | 第19页 |
| ·主要试剂配制 | 第19-20页 |
| 2. 方法 | 第20-22页 |
| ·微流控芯片的设计 | 第20页 |
| ·微流控芯片的制作 | 第20页 |
| ·微流控芯片使用前的处理 | 第20页 |
| ·利用细胞培养瓶对 PC12 细胞进行常规培养 | 第20-21页 |
| ·微流控芯片上对 PC12 细胞进行培养 | 第21页 |
| ·PC12 细胞活性检测 | 第21-22页 |
| 结果 | 第22-24页 |
| 1. 微流控芯片的设计与制作 | 第22-23页 |
| 2. 微流控芯片细胞培养 | 第23-24页 |
| 讨论 | 第24-27页 |
| 结论 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-32页 |
| 实验二 运用微流控芯片探讨 FK506、NGF 对 PC12 细胞轴突生长的影响 | 第32-45页 |
| 前言 | 第32页 |
| 材料和方法 | 第32-35页 |
| 1. 材料 | 第32-33页 |
| ·细胞株 | 第32页 |
| ·主要仪器与设备 | 第32-33页 |
| ·主要试剂 | 第33页 |
| ·主要试剂配制 | 第33页 |
| 2. 方法 | 第33-35页 |
| ·微流控芯片的设计、制作 | 第33页 |
| ·微流控芯片细胞培养及药物干预 | 第33-34页 |
| ·在微流控芯片上采用免疫细胞化学方法检测 PC12 细胞 NF200 表 | 第34-35页 |
| ·常规多孔板(96 孔板)法进行的平行试验 | 第35页 |
| ·统计学分析 | 第35页 |
| 结果 | 第35-37页 |
| 1. 微流控芯片上免疫细胞化学方法检测 PC12 细胞 NF200 表达情况 | 第35-37页 |
| 2. 两种检测平台上进行的免疫细胞化学方法检测 PC12 细胞NF200 表达情况的结果对比 | 第37页 |
| 3. 两种检测平台上进行的免疫细胞化学方法检测 PC12 细胞NF200 表达情况试剂消耗量对比 | 第37页 |
| 讨论 | 第37-41页 |
| 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-45页 |
| 实验三 联合应用 FK506、NGF 治疗大鼠脊髓损伤的实验研究 | 第45-65页 |
| 前言 | 第45-46页 |
| 材料和方法 | 第46-51页 |
| 1. 材料 | 第46-47页 |
| ·实验动物 | 第46页 |
| ·主要试剂 | 第46页 |
| ·主要试剂配制 | 第46-47页 |
| ·主要仪器 | 第47页 |
| 2. 方法 | 第47-51页 |
| ·动物分组及脊髓损伤模型制备 | 第47-48页 |
| ·损伤区样本处理 | 第48页 |
| ·脊髓组织病理学观察 | 第48页 |
| ·免疫组化检测 NF200 表达 | 第48-49页 |
| ·RT-PCR 检测 NF200mRNA 表达 | 第49-50页 |
| ·应用 BBB 评分对各组大鼠脊髓功能恢复情况进行评估 | 第50-51页 |
| ·统计学分析 | 第51页 |
| 结果 | 第51-55页 |
| 1. 脊髓组织病理学改变 | 第51-52页 |
| 2 脊髓损伤后 NF200 表达情况 | 第52-54页 |
| 3 脊髓损伤后运动功能恢复情况 | 第54-55页 |
| 讨论 | 第55-59页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| 综述 | 第65-79页 |
| 参考文献 | 第73-79页 |
| 附录 | 第79-81页 |
| 攻读学位期间发表文章情况 | 第81-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
