| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 第一章 引言 | 第11-17页 |
| ·分子生物学技术 | 第11-12页 |
| ·原位杂交(In situ hybridization，ISH) 技术 | 第11-12页 |
| ·聚合酶链式反应（polymerase chain reaction，PCR）技术 | 第12页 |
| ·基因芯片（Gene chip）技术 | 第12页 |
| ·免疫学技术 | 第12-14页 |
| ·荧光免疫检测（Fluorescent immunoassay，FIA）技术 | 第12-13页 |
| ·酶联免疫吸附检测(Enzyme-1inked immunosorbent assay，ELISA)技术 | 第13页 |
| ·化学发光免疫分析（Chemiluminescence immunoassay，CLIA）技术 | 第13-14页 |
| ·免疫胶体金（Immune colloidal gold，ICG）标记技术 | 第14页 |
| ·免疫磁性分离技术 | 第14页 |
| ·酶学技术 | 第14-16页 |
| ·在水产品卫生安全检测中的应用前景分析 | 第16-17页 |
| 第二章 基于分光光度法的大肠菌群单管定量检测技术研究 | 第17-28页 |
| ·材料与方法 | 第17-20页 |
| ·材料与仪器 | 第17-19页 |
| ·菌悬液制备 | 第19页 |
| ·ONPG 酶解产物最佳检测波长的确定 | 第19页 |
| ·大肠菌群酶解 ONPG 产物的 OD405值分析 | 第19页 |
| ·培养温度对大肠菌群生长及培养液 OD405值的影响 | 第19页 |
| ·pH 值对大肠菌群生长及培养液 OD405值的影响 | 第19页 |
| ·大肠菌群接种量与 OD405值的关系 | 第19-20页 |
| ·单管定量检测法的相对标准偏差 | 第20页 |
| ·结果 | 第20-25页 |
| ·ONPG 酶解产物最佳检测波长的分析 | 第20页 |
| ·大肠菌群酶解 ONPG 产物的 OD405值变化特性 | 第20-21页 |
| ·培养条件对培养液吸光度及大肠菌群生长的影响 | 第21-24页 |
| ·大肠菌群接种量与培养液 OD405值的关系 | 第24-25页 |
| ·不同检测方法的相对标准差 | 第25页 |
| ·讨论 | 第25-28页 |
| 第三章 MUG 单管定量检测法与多管发酵法在检测海水和水产品中大肠埃希氏菌的比较研究 | 第28-38页 |
| ·材料与方法 | 第29-32页 |
| ·材料与仪器 | 第29-31页 |
| ·菌悬液的制备 | 第31页 |
| ·检测方法 | 第31页 |
| ·样品检测 | 第31页 |
| ·数据分析 | 第31-32页 |
| ·结果与分析 | 第32-36页 |
| ·对实验室制备的菌悬液的检测结果 | 第32-33页 |
| ·对天然海水的检测结果 | 第33-35页 |
| ·对水产品的检测结果 | 第35-36页 |
| ·讨论 | 第36-38页 |
| 第四章 ONPG 单管定量检测法与多管发酵法在检测海水和水产品中大肠菌群的比较研究 | 第38-47页 |
| ·材料与方法 | 第38-42页 |
| ·材料与仪器 | 第38-41页 |
| ·菌悬液的制备 | 第41页 |
| ·检测方法 | 第41页 |
| ·样品检测 | 第41-42页 |
| ·数据分析 | 第42页 |
| ·结果与分析 | 第42-45页 |
| ·对实验室制备的菌悬液的检测结果 | 第42-43页 |
| ·对天然海水的检测结果 | 第43-45页 |
| ·对水产品的检测结果 | 第45页 |
| ·讨论 | 第45-47页 |
| 第五章 小结与展望 | 第47-49页 |
| ·小结 | 第47页 |
| ·创新点 | 第47页 |
| ·展望 | 第47-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-57页 |
| 在学期间发表的学术论文 | 第57页 |
