中文摘要 | 第1-11页 |
英文摘要 | 第11-12页 |
前言 | 第12-39页 |
1 引言 | 第12-17页 |
·手性化合物拆分的意义 | 第12-13页 |
·CE在对映体拆分汇总的应用 | 第13-14页 |
·毛细管电泳手性拆分原理 | 第14-17页 |
2 环糊精手性识别机理 | 第17-23页 |
·环糊精的基本结构 | 第17-18页 |
·对映体环糊精拆分机理 | 第18-19页 |
·环糊精拆分对映体的影响因素 | 第19-23页 |
3 常规拆分策略 | 第23页 |
4 手性毛细管电泳的应用与发展方向 | 第23-24页 |
5 本论文的研究工作 | 第24页 |
6 计算 | 第24-30页 |
参考文献 | 第30-39页 |
第一章 毛细管区带电泳法拆分盐酸戊甲咛酯 | 第39-58页 |
1 引言 | 第39-40页 |
2 实验部分 | 第40-41页 |
·试剂 | 第40页 |
·仪器 | 第40页 |
·溶液配制 | 第40页 |
·毛细管电泳实验条件 | 第40-41页 |
3 结果与讨论 | 第41-56页 |
·手性添加剂种类对分离的影响 | 第41页 |
·环糊精浓度对分离的影响 | 第41-44页 |
·背景电解质pH对分离的影响 | 第44-46页 |
·背景电解质浓度对分离的影响 | 第46-49页 |
·电压对分离的影响 | 第49-52页 |
·温度对分离的影响 | 第52-54页 |
·有机改性剂的选择及其浓度对分离的影响 | 第54-56页 |
4 小结 | 第56-57页 |
5 参考文献 | 第57-58页 |
第二章 正交实验设计法——手性药物最佳分离条件的快速筛选 | 第58-74页 |
1 引言 | 第58-59页 |
2 实验部分 | 第59-61页 |
·试剂 | 第59-60页 |
·仪器 | 第60页 |
·溶液配制 | 第60页 |
·毛细管电泳实验条件 | 第60-61页 |
3 正交实验设计 | 第61-67页 |
4 结果与讨论 | 第67-73页 |
·pH | 第67-70页 |
·CD种类及浓度 | 第70-72页 |
·背景电解质的种类及浓度 | 第72-73页 |
·有机改性剂 | 第73页 |
·温度 | 第73页 |
5 小结 | 第73-74页 |
第三章 佐米曲坦对映体-环糊精包和机理的CZE法及NMR法研究 | 第74-89页 |
1 引言 | 第74-75页 |
2 实验部分 | 第75-77页 |
·试剂 | 第75页 |
·仪器 | 第75-76页 |
·溶液配制 | 第76页 |
·毛细管电泳实验条件 | 第76-77页 |
3 结果与讨论 | 第77-88页 |
·羟丙基环糊精与佐米曲坦包和常数的测定 | 第77-79页 |
·NMR | 第79-88页 |
4 结论 | 第88-89页 |
第四章 双胶束双手性添加剂胶束电动色谱法分离两性手性药物西替利嗪 | 第89-110页 |
1 引言 | 第89-91页 |
2 实验部分 | 第91-92页 |
·试剂 | 第91-92页 |
·仪器 | 第92页 |
·溶液配制 | 第92页 |
·毛细管电泳实验条件 | 第92页 |
3 结果与讨论 | 第92-108页 |
·实验方案 | 第92-93页 |
·正交实验设计 | 第93-102页 |
·环糊精种类的选择 | 第102页 |
·pH对分离的影响 | 第102-103页 |
·分离温度的选择 | 第103-104页 |
·环糊精浓度对分离的影响 | 第104-105页 |
·SDS浓度对分离的影响 | 第105-107页 |
·TDCA浓度对分离的影响 | 第107-108页 |
4 小结 | 第108-109页 |
5 参考文献 | 第109-110页 |
第五章 手性药物毛细管电泳拆分法在新药质控中的应用 | 第110-115页 |
1 引言 | 第110页 |
2 实验部分 | 第110-112页 |
·试剂 | 第110页 |
·仪器 | 第110-111页 |
·溶液配制 | 第111页 |
·毛细管电泳实验条件 | 第111-112页 |
3 结果与讨论 | 第112-113页 |
·方法精密度考察 | 第112页 |
·最低检测限 | 第112页 |
·不同批号药品的测定 | 第112-113页 |
4 小结 | 第113-115页 |
结束语 | 第115-116页 |
致谢 | 第116页 |