| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-25页 |
| ·肝脏 | 第10-11页 |
| ·生物人工肝 | 第11-19页 |
| ·研究现状 | 第11-12页 |
| ·肝细胞来源 | 第12-13页 |
| ·肝细胞培养 | 第13-14页 |
| ·细胞外基质材料 | 第14-17页 |
| ·细胞与基质材料的相互作用 | 第17-18页 |
| ·细胞培养条件的优化 | 第18-19页 |
| ·生长因子及其控制释放体系 | 第19-21页 |
| ·生长因子的特点和功能 | 第19-20页 |
| ·生长因子的控制释放体系 | 第20-21页 |
| ·基因转染在组织工程中的应用 | 第21-24页 |
| ·基因传递的途径 | 第21-22页 |
| ·基因传递的载体 | 第22-24页 |
| ·课题提出 | 第24-25页 |
| 第二章 壳聚糖-半乳糖化透明质酸三维多孔支架的制备研究 | 第25-45页 |
| ·引言 | 第25-26页 |
| ·实验部分 | 第26-30页 |
| ·实验材料 | 第26-27页 |
| ·实验设备 | 第27-28页 |
| ·半乳糖化透明质酸的合成和性能表征 | 第28页 |
| ·壳聚糖-半乳糖化透明质酸支架的制备 | 第28-29页 |
| ·三维支架的红外光谱 | 第29页 |
| ·三维支架的X射线光电子能谱分析（XPS） | 第29页 |
| ·三维支架的扫描电镜观察（SEM） | 第29页 |
| ·三维支架的孔隙率的测定 | 第29页 |
| ·静态接触角的测定 | 第29-30页 |
| ·三维支架机械性能的测定 | 第30页 |
| ·结果与讨论 | 第30-44页 |
| ·半乳糖化透明质酸的合成和表征 | 第30-33页 |
| ·壳聚糖-半乳糖化透明质酸支架 | 第33-38页 |
| ·红外光谱 | 第38-39页 |
| ·X射线光电子能谱分析 | 第39-42页 |
| ·静态接触角的测定 | 第42-43页 |
| ·支架的机械性能测定 | 第43-44页 |
| ·小结 | 第44-45页 |
| 第三章 原代大鼠肝细胞的体外培养研究 | 第45-66页 |
| ·引言 | 第45-46页 |
| ·实验部分 | 第46-51页 |
| ·实验材料 | 第46-47页 |
| ·实验设备 | 第47页 |
| ·实验试剂配制 | 第47-48页 |
| ·原代大鼠肝细胞的分离 | 第48-49页 |
| ·原代大鼠肝细胞的贴附实验 | 第49页 |
| ·原代大鼠肝细胞在支架中的培养 | 第49-50页 |
| ·扫描电镜观察细胞在支架中的生长 | 第50页 |
| ·支架切片观察 | 第50页 |
| ·细胞活性测定 | 第50-51页 |
| ·原代肝细胞的动态培养 | 第51页 |
| ·结果与讨论 | 第51-65页 |
| ·原代大鼠肝细胞的分离 | 第51-52页 |
| ·原代大鼠肝细胞在材料上的贴附 | 第52-55页 |
| ·原代大鼠肝细胞在支架中的培养 | 第55-57页 |
| ·原代肝细胞活性的测定 | 第57-59页 |
| ·肝实质细胞与非实质细胞的共同培养 | 第59-61页 |
| ·原代肝细胞的动态培养 | 第61-65页 |
| ·小结 | 第65-66页 |
| 第四章 基于壳聚糖-GHA支架的生长因子控制释放体系的研究 | 第66-83页 |
| ·引言 | 第66-67页 |
| ·实验部分 | 第67-70页 |
| ·实验材料 | 第67-68页 |
| ·实验设备 | 第68页 |
| ·壳聚糖-GHA支架的制备 | 第68页 |
| ·支架肝素化实验 | 第68-69页 |
| ·肝素复合支架的表征 | 第69页 |
| ·肝素复合支架的肝素释放实验 | 第69页 |
| ·甲苯胺蓝方法检测肝素 | 第69-70页 |
| ·肝素复合支架结合EGF和EGF的释放实验 | 第70页 |
| ·结果与讨论 | 第70-81页 |
| ·甲苯胺蓝方法检测肝素 | 第70-71页 |
| ·壳聚糖-GHA支架的肝素化 | 第71-74页 |
| ·肝素从复合支架上的释放 | 第74-75页 |
| ·肝素复合支架的表征 | 第75-80页 |
| ·肝素-EGF复合支架的EGF释放 | 第80-81页 |
| ·小结 | 第81-83页 |
| 第五章 基于高分子多糖支架的基因转染研究 | 第83-107页 |
| ·引言 | 第83-84页 |
| ·实验部分 | 第84-90页 |
| ·实验材料 | 第84-85页 |
| ·实验设备 | 第85页 |
| ·质粒的制备 | 第85-87页 |
| ·细胞系的培养 | 第87-88页 |
| ·PEI的细胞毒性实验 | 第88页 |
| ·PEI/DNA转染最佳N/P比的选择实验 | 第88-89页 |
| ·PEI/DNA转染最佳DNA加入量的选择实验 | 第89页 |
| ·不同类型细胞系间的转染差异 | 第89页 |
| ·二维培养的原代肝实质细胞的转染 | 第89页 |
| ·三维支架中的细胞转染 | 第89-90页 |
| ·PEI/DNA复合物的Zeta电势和颗粒粒径 | 第90页 |
| ·海藻酸对PEI/DNA转染体系的影响 | 第90页 |
| ·结果与讨论 | 第90-106页 |
| ·质粒的制备 | 第90-91页 |
| ·PEI的细胞毒性实验 | 第91-92页 |
| ·PEI/DNA转染的最佳N/P比 | 第92-94页 |
| ·PEI/DNA转染的最佳DNA加入量 | 第94-97页 |
| ·不同细胞系细胞间的转染差异实验 | 第97页 |
| ·大鼠原代肝实质细胞的二维转染 | 第97-100页 |
| ·三维支架中的细胞转染 | 第100-101页 |
| ·动态光散射测定PEI/DNA复合物的Zeta电势和粒径 | 第101-104页 |
| ·海藻酸对PEI/DNA转染体系的影响 | 第104-106页 |
| ·小结 | 第106-107页 |
| 第六章 全文总结和创新点 | 第107-109页 |
| 参考文献 | 第109-121页 |
| 发表论文和科研情况说明 | 第121-122页 |
| 致谢 | 第122页 |
