摘要 | 第6-7页 |
abstract | 第7-8页 |
第一章 引言 | 第13-22页 |
1.1 日本血吸虫概述 | 第13-15页 |
1.1.1 日本血吸虫的生物学特征及形态学特征 | 第13页 |
1.1.2 日本血吸虫生活史 | 第13页 |
1.1.3 日本血吸虫的中间宿主和终末宿主 | 第13-14页 |
1.1.4 家畜在血吸虫病传播中的作用 | 第14-15页 |
1.2 日本血吸虫基因组研究进展 | 第15页 |
1.3 日本血吸虫转录组的研究进展 | 第15-19页 |
1.3.1 转录组及转录组测序技术 | 第15-16页 |
1.3.2 转录组测序技术原理 | 第16页 |
1.3.3 RNA-seq测序技术的应用 | 第16-17页 |
1.3.4 转录组学技术在日本血吸虫研究上的研究进展 | 第17-19页 |
1.4 蛋白质组学及其在日本血吸虫研究中的进展 | 第19-21页 |
1.4.1 蛋白质组学及TMT技术 | 第19-20页 |
1.4.2 蛋白质组学技术在日本血吸虫研究中的进展 | 第20-21页 |
1.5 本研究的目的 | 第21-22页 |
第二章 日本血吸虫在初次感染和再次感染水牛中的形态学观察及水牛外周血淋巴细胞细胞因子表达水平检测 | 第22-31页 |
2.1 引言 | 第22页 |
2.2 实验材料 | 第22-23页 |
2.2.1 生物材料 | 第22页 |
2.2.2 主要仪器与生化材料 | 第22-23页 |
2.3 实验方法 | 第23-26页 |
2.3.1 实验动物感染 | 第23-24页 |
2.3.2 虫体收集与比较 | 第24页 |
2.3.3 不同处理组水牛来源虫体的形态学观察 | 第24页 |
2.3.4 不同处理组水牛淋巴细胞细胞因子转录水平检测 | 第24-26页 |
2.4 结果 | 第26-28页 |
2.4.1 不同处理组水牛来源虫体发育情况及形态学比较 | 第26-27页 |
2.4.2 不同处理组水牛淋巴细胞细胞因子表达水平检测 | 第27-28页 |
2.5 讨论 | 第28-31页 |
第三章 初次感染和再次感染水牛日本血吸虫的转录组差异分析 | 第31-51页 |
3.1 引言 | 第31页 |
3.2 实验材料 | 第31-32页 |
3.2.1 生物材料 | 第31页 |
3.2.2 主要仪器与生化材料 | 第31-32页 |
3.3 试验方法 | 第32-34页 |
3.3.1 动物感染 | 第32页 |
3.3.2 虫体收集 | 第32页 |
3.3.3 虫体RNA提取及cDNA文库构建 | 第32-33页 |
3.3.4 转录组文库构建 | 第33页 |
3.3.5 RNA-seq与数据分析 | 第33页 |
3.3.6 实时定量PCR对 RNA-seq结果的验证 | 第33-34页 |
3.4 结果 | 第34-47页 |
3.4.1 总RNA提取 | 第34-35页 |
3.4.2 RNA文库构建以及RNA测序 | 第35-39页 |
3.4.3 差异表达基因(DEGs)的GO和 KEGG通路分析 | 第39-46页 |
3.4.4 RNA测序数据的qPCR验证 | 第46-47页 |
3.5 讨论 | 第47-51页 |
第四章 初次感染和再次感染水牛日本血吸虫的蛋白质组差异分析 | 第51-66页 |
4.1 引言 | 第51页 |
4.2 实验材料 | 第51-52页 |
4.2.1 生物材料 | 第51页 |
4.2.2 主要仪器与生化材料 | 第51-52页 |
4.3 试验方法 | 第52-54页 |
4.3.1 寄生虫感染与收集 | 第52页 |
4.3.2 蛋白质提取以及SDS-PAGE电泳 | 第52页 |
4.3.3 FASP酶解,TMT标记以及肽段分馏 | 第52-53页 |
4.3.4 高效液相色谱分析,质谱鉴定及生物信息学分析 | 第53页 |
4.3.5 qPCR验证TMT数据 | 第53-54页 |
4.4 实验结果 | 第54-62页 |
4.4.1 蛋白SDS-PAGE分析 | 第54-55页 |
4.4.2 来源于初次感染和再次感染水牛日本血吸虫的整体蛋白质组学分析 | 第55-57页 |
4.4.3 差异表达蛋白(DEPs)的生物信息学分析 | 第57-61页 |
4.4.4 差异表达蛋白的qPCR验证分析 | 第61-62页 |
4.5 讨论 | 第62-66页 |
第五章 全文总结 | 第66-67页 |
参考文献 | 第67-75页 |
致谢 | 第75-76页 |
作者简介 | 第76页 |