| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩略词 | 第10-11页 |
| 引言 | 第11-15页 |
| 第一章 甘草查尔酮B诱导MCF-7细胞凋亡 | 第15-22页 |
| 1.1 实验材料及器材 | 第15-16页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第15页 |
| 1.1.2 实验器材 | 第15-16页 |
| 1.2 实验方法 | 第16-18页 |
| 1.2.1 实验相关试剂的调配 | 第16页 |
| 1.2.2 细胞的培养 | 第16-17页 |
| 1.2.3 SRB法检测LCB抑制细胞生长作用 | 第17页 |
| 1.2.4 倒置显微镜观测LCB处理后MCF-7细胞的形态 | 第17页 |
| 1.2.5 荧光显微镜下观察细胞形态 | 第17-18页 |
| 1.2.6 细胞总凋亡率的测定 | 第18页 |
| 1.2.7 实验数据分析 | 第18页 |
| 1.3 实验结果 | 第18-21页 |
| 1.3.1 LCB抑制MCF-7细胞的增殖 | 第18-19页 |
| 1.3.2 MCF-7细胞形态学的改变 | 第19-20页 |
| 1.3.3 LCB诱导MCF-7细胞凋亡 | 第20页 |
| 1.3.4 LCB导致MCF-7细胞总凋亡率明显升高 | 第20-21页 |
| 1.4 小结 | 第21页 |
| 1.5 讨论 | 第21-22页 |
| 第二章 甘草查尔酮B对细胞周期的影响及其机制 | 第22-32页 |
| 2.1 实验材料及器材 | 第22-23页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第22页 |
| 2.1.2 实验器材 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-28页 |
| 2.2.1 实验相关试剂调配 | 第23页 |
| 2.2.2 细胞的培养 | 第23-24页 |
| 2.2.3 细胞周期的检测 | 第24页 |
| 2.2.4 LCB对MCF-7内周期相关mRNA的影响 | 第24-26页 |
| 2.2.5 Western blot检测周期相关蛋白表达 | 第26-28页 |
| 2.2.6 实验数据分析 | 第28页 |
| 2.3 实验结果 | 第28-30页 |
| 2.3.1 LCB对MCF-7细胞周期的作用 | 第28-29页 |
| 2.3.2 LCB对CDK2、Cyclin A、CDC 25A基因水平调节 | 第29-30页 |
| 2.3.3 LCB对周期相关蛋白水平的影响 | 第30页 |
| 2.4 小结 | 第30-31页 |
| 2.5 讨论 | 第31-32页 |
| 第三章 甘草查尔酮B通过线粒体途径诱导MCF-7细胞凋亡的机制 | 第32-46页 |
| 3.1 实验材料及器材 | 第32-33页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第32页 |
| 3.1.2 实验器材 | 第32-33页 |
| 3.2 实验方法 | 第33-40页 |
| 3.2.1 实验相关试剂的调配 | 第33页 |
| 3.2.2 细胞的培养 | 第33-34页 |
| 3.2.3 细胞内ROS水平的测定 | 第34页 |
| 3.2.4 线粒体膜电势测定 | 第34-35页 |
| 3.2.5 实时荧光定量PCR检测LCB对凋亡相关mRNA水平的影响 | 第35-37页 |
| 3.2.6 Western blot检测凋亡相关蛋白表达 | 第37-39页 |
| 3.2.7 实验数据分析 | 第39-40页 |
| 3.3 实验结果 | 第40-43页 |
| 3.3.1 MCF-7内总ROS水平的变化 | 第40页 |
| 3.3.2 LCB诱导MCF-7细胞线粒体膜电势能下降 | 第40-41页 |
| 3.3.3 LCB对凋亡相关基因水平的改变 | 第41-42页 |
| 3.3.4 LCB对凋亡相关蛋白水平的影响 | 第42-43页 |
| 3.4 小结 | 第43页 |
| 3.5 讨论 | 第43-46页 |
| 参考文献 | 第46-49页 |
| 第四章 综述 甘草查尔酮B药理作用的概述 | 第49-55页 |
| 参考文献 | 第53-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 学术论文目录 | 第56页 |
