摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 绪论 | 第9-24页 |
1.1 研究背景和意义 | 第9页 |
1.2 光电化学传感器的基本原理 | 第9-11页 |
1.3 光电化学传感器的基本分类 | 第11页 |
1.4 不同传感策略的光电化学传感器的应用 | 第11-23页 |
1.4.1 光电活性物质做标记 | 第12-15页 |
1.4.2 能量转移 | 第15-17页 |
1.4.3 构型改变 | 第17-19页 |
1.4.4 空间位阻 | 第19-21页 |
1.4.5 酶标记 | 第21-23页 |
1.5 本章小结 | 第23-24页 |
第二章 基于激子能量转移及酶剪切技术的PEC传感器 | 第24-34页 |
2.1 引言 | 第24-25页 |
2.2 实验部分 | 第25-28页 |
2.2.1 试剂 | 第25-26页 |
2.2.2 仪器 | 第26页 |
2.2.3 CdSe QDs的制备 | 第26-27页 |
2.2.4 Au NPs的制备 | 第27页 |
2.2.5 Au NPs与巯基修饰的DNA相连 | 第27页 |
2.2.6 该PEC生物传感器的组装过程 | 第27-28页 |
2.3 实验结果与讨论 | 第28-33页 |
2.3.1 Au NPs与CdSe QDs的表征 | 第28页 |
2.3.2 该PEC生物传感器的阻抗表征 | 第28-29页 |
2.3.3 该PEC生物传感器的光电化学表征 | 第29-30页 |
2.3.4 该PEC生物传感器的实验条件优化 | 第30-31页 |
2.3.5 该PEC生物传感器的校准曲线 | 第31-32页 |
2.3.6 该PEC生物传感器的选择性和稳定性表征 | 第32页 |
2.3.7 甲基转移酶抑制剂的抑制效果监测 | 第32-33页 |
2.4 本章小结 | 第33-34页 |
第三章 基于链延伸及酶催化双信号放大的PEC传感器 | 第34-47页 |
3.1 引言 | 第34-36页 |
3.2 实验部分 | 第36-38页 |
3.2.1 试剂 | 第36页 |
3.2.2 仪器 | 第36-37页 |
3.2.3 GR-CdS:Mn纳米复合物的制备 | 第37页 |
3.2.4 该PEC生物传感器的构建过程 | 第37-38页 |
3.3 实验结果与讨论 | 第38-46页 |
3.3.1 纳米复合物的表征及元素分析 | 第38-39页 |
3.3.2 GO、GR、GR-CdS及GR-CdS:Mn紫外、XRD、红外和拉曼表征 | 第39-40页 |
3.3.3 GR-CdS:Mn的光电性质表征 | 第40-42页 |
3.3.4 该PEC生物传感器的实验条件优化 | 第42-43页 |
3.3.5 该PEC生物传感器的光电流测试及阻抗表征 | 第43-44页 |
3.3.6 该PEC生物传感器的校准曲线 | 第44-45页 |
3.3.7 该PEC生物传感器的选择性及稳定性表征 | 第45-46页 |
3.4 本章小结 | 第46-47页 |
第四章 基于DSN剪切技术检测miRNA的PEC传感器 | 第47-54页 |
4.1 引言 | 第47-48页 |
4.2 实验部分 | 第48-50页 |
4.2.1 试剂 | 第48页 |
4.2.2 仪器 | 第48-49页 |
4.2.3 Au NPs的制备 | 第49页 |
4.2.4 GR的制备 | 第49页 |
4.2.5 GR-Au NPs的合成 | 第49页 |
4.2.6 GR-Au NPs与巯基修饰的DNA相连 | 第49页 |
4.2.7 该PEC传感器的组装 | 第49-50页 |
4.3 结果和讨论 | 第50-53页 |
4.3.1 CdSe QDs、Au NPs、GR和GR-Au纳米复合物的表征 | 第50-51页 |
4.3.2 该PEC生物传感器的光电性质表征 | 第51页 |
4.3.3 该PEC生物传感器的电化学阻抗表征 | 第51-52页 |
4.3.4 该PEC生物传感器的性能表征 | 第52-53页 |
4.4 本章小结 | 第53-54页 |
第五章 总结与展望 | 第54-56页 |
5.1 总结 | 第54页 |
5.2 创新点 | 第54-55页 |
5.3 展望 | 第55-56页 |
参考文献 | 第56-64页 |
附录1 攻读硕士学位期间撰写的论文 | 第64-65页 |
附录2 攻读硕士学位期间参加的科研项目 | 第65-66页 |
致谢 | 第66页 |